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Ricerca sul cancro
0 visualizzazioni • 3:50 min • April 30th, 2023
- Le specie reattive dell'ossigeno sono prodotte prevalentemente dai mitocondri quando gli elettroni fuoriescono dalla catena di trasporto degli elettroni. Questi elettroni si combinano con l'ossigeno molecolare dando origine a varie specie reattive dell'ossigeno, o ROS. Nelle cellule tumorali c'è una sovrapproduzione di specie reattive dell'ossigeno. Queste molecole di ROS altamente reattive possono danneggiare ossidativamente membrane, proteine e DNA all'interno della cellula.
L'aumento dei livelli di ROS danneggia il DNA portando all'attivazione di una via di segnalazione oncogenica che causa la progressione del cancro. Pertanto, è fondamentale rilevare i livelli di specie reattive dell'ossigeno prodotte dalle cellule tumorali.
Inizia prelevando cellule tumorali dal cancro del colon-retto umano in un terreno di coltura appropriato. Quindi, seminare queste cellule in una piastra multipozzetto e aggiungere la soluzione DCFH-DA. Incubare la piastra per la durata desiderata. Il DCFH-DA attraversa la membrana cellulare. Una volta all'interno della cellula, il DCFH-DA si converte in DCFH in presenza di un enzima esterasi cellulare. Inoltre, l'ossidazione del DCFH da parte delle specie reattive dell'ossigeno produce molecole fluorescenti verdi.
Osservare le cellule al microscopio a fluorescenza. L'intensità della fluorescenza verde indica il livello di specie reattive dell'ossigeno nella cellula. Nel seguente protocollo, utilizziamo il colorante DCFH-DA per colorare le specie reattive dell'ossigeno nelle cellule tumorali del colon-retto.
- Per colorare le cellule, rimuovere il terreno contenente il farmaco e lavarle una volta con DMEM. Aggiungere 500 microlitri di soluzione di lavoro DCFH-DA in ciascun pozzetto e incubare la piastra a 37 gradi Celsius per 30 minuti. Dopo l'incubazione, rimuovere il DCFH-DA dai pozzetti e lavarli due volte con DMEM e una volta con PBS.
Quindi, aggiungi 500 microlitri di PBS a ciascun pozzetto. Utilizzare il canale proteico fluorescente verde sul microscopio a fluorescenza per scattare immagini rappresentative delle cellule. Quindi, rimuovere il PBS e aggiungere 200 microlitri di tampone per il saggio di radioimmunoprecipitazione a ciascun pozzetto.
Incubare la piastra su ghiaccio per cinque minuti e raccogliere i lisati cellulari in provette da 1,5 millilitri. Centrifugare le provette a 21.130 x g per 10 minuti a 4 gradi Celsius. Quindi, trasferire 100 microlitri di surnatante in una piastra nera a 96 pozzetti. Utilizzare un lettore di micropiastre a una lunghezza d'onda di eccitazione di 485 nanometri e una lunghezza d'onda di emissione di 530 nanometri per misurare la fluorescenza in ciascun pozzetto.
Successivamente, misurare la concentrazione proteica con il saggio di Bradford trasferendo 1 microlitro di surnatante in una piastra trasparente a 96 pozzetti con 100 microlitri di soluzione per il saggio proteico. Utilizzare le concentrazioni proteiche per normalizzare le intensità di fluorescenza.
Questo studio analizza la produzione di specie reattive dell'ossigeno (ROS) nelle cellule del cancro del colon-retto e il loro ruolo nella progressione tumorale. La metodologia prevede la colorazione delle cellule tumorali con DCFH-DA per misurare i livelli di ROS mediante microscopia a fluorescenza.
Il rilevamento quantitativo delle specie reattive dell'ossigeno (ROS) totali in linee cellulari di cancro del colon-retto consente la riduzione del rischio meccanicistico e la validazione degli obiettivi nella scoperta oncologica. Il protocollo di colorazione con DCFH-DA fornisce una misurazione standardizzata e riproducibile dei ROS, sostenendo la previsione nei programmi di biologia del cancro in fase iniziale. Questa capacità orienta la selezione e la priorizzazione del portafoglio collegando lo stress ossidativo alla segnalazione oncogenica e alla progressione della malattia.
Il saggio di rilevamento delle ROS con DCFH-DA si inserisce nel continuum dalla scoperta alla fase preclinica, consentendo test di ipotesi solidi e analisi quantitativa dei percorsi nei modelli di cellule tumorali.
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Ultimo aggiornamento: 22 agosto 2026