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- La proteina tau si localizza perifericamente al nucleolo nelle cellule tumorali del colon-retto e aiuta a mantenere la struttura nucleolare. Per lo più, queste cellule esprimono la proteina tau iperfosforilata, che si traduce in resistenza ai farmaci. Pertanto, analizziamo i livelli di fosforilazione della tau eseguendo un saggio della fosfatasi.
Inizia prendendo il lisato cellulare contenente proteine totali da cellule tumorali del colon-retto umano in due fiale etichettate come test e controllo. Trattare il campione di prova con l'enzima fosfatasi alcalina. La fosfatasi alcalina rimuove i gruppi fosfato dalla tau, mentre la fiala di controllo trattiene la proteina tau fosforilata.
Successivamente, eseguire sia il campione che la tau di controllo su un gel di poliacrilammide per separare le proteine. La tau fosforilata si muove più lentamente sul gel rispetto alla proteina tau non fosforilata. Elettrocolorare il campione proteico su una membrana adatta e aggiungere anticorpi primari corrispondenti sia alla tau fosforilata che a quella normale.
Incubare il blot durante la notte. Trattare il blot con un anticorpo secondario coniugato con un enzima reporter che si lega alla regione Fc dell'anticorpo primario. Infine, sviluppare il blot utilizzando un substrato chemiluminescente per identificare la proteina tau dal campione proteico totale presente nel blot. Nel seguente protocollo, dimostreremo il saggio della fosfatasi per valutare lo stato complessivo di fosforilazione della tau nelle cellule CRC.
- Dopo aver preparato campioni contenenti 20 microgrammi di proteine totali, aggiungere a ciascuno due microlitri di tampone fosfatasi alcalina e 10 microlitri di fosfatasi alcalina. Quindi, aggiungere acqua distillata in modo che il volume finale di ciascun campione sia di 20 microlitri.
Incubare i campioni a 37 gradi Celsius per un'ora. Durante l'incubazione dei campioni, preparare ulteriori campioni alla stessa concentrazione, ma senza fosfatasi per il confronto. Dopo un'ora, interrompere la reazione aggiungendo EDTA a una concentrazione finale di 50 millimolari o ortovanadato di sodio a una concentrazione finale di 10 millimolari.
Aggiungere il tampone di caricamento del gel SDS 4X appena preparato contenente 400 millimolari DTT. Utilizzando un blocco termico, incubare i campioni a 100 gradi Celsius per cinque minuti. Agitare i campioni e lasciarli raffreddare a temperatura ambiente per 10-15 minuti.
Quindi, caricare 13 microlitri di campione per pozzetto e la scala del peso molecolare su un gel di poliacrilammide al 10%. Collegare il sistema di elettroforesi a una fonte di alimentazione e impostare la tensione a 70 volt per 20 minuti per spostare i campioni di proteine dal gel di impilamento al gel risolutivo.
Dopodiché, aumentare a 125 volt e far funzionare il gel per circa 70-120 minuti, fino a quando i campioni e la scala proteica raggiungono la fine del gel. Utilizzando un sistema di elettroblotting a umido, trasferire il gel su una membrana di fluoruro di polivinilidene a 100 volt per circa 100 minuti.
Successivamente, incubare la membrana per tamponare con albumina sierica bovina al 4% per 90 minuti a temperatura ambiente. Incubare il blot per una notte in una soluzione di anticorpi primari a 4 gradi Celsius. Il giorno successivo, lavare la macchia tre volte in PBST, lavando per sette minuti ogni volta.
Incubare nella relativa soluzione di anticorpi secondari per 90 minuti a temperatura ambiente. Quindi, lavare con PBST quattro volte, con ogni lavaggio della durata di sette minuti. Sviluppare il blot utilizzando un kit di chemiluminescenza secondo le istruzioni del produttore.
Coprire il blot sviluppato con un involucro di plastica trasparente e quindi acquisire immagini in chemiluminescenza del blot con un sistema di imaging a chemiluminescenza disponibile in commercio.