Name: Profilatura di pre-micro-RNA e microRNA con Quantitative Real-time PCR (qPCR) Array (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-12-03T17:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 58 s
Description: Impara a configurare array qPCR per il profiling di pre-microRNA e microRNA utilizzando metodi automatizzati e manuali. Questa tecnica consente analisi accurate dell'espressione genica in biologia molecolare.

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Questo lavoro è stato supportato da sovvenzioni NIH DE018304, R01DE018281. KT è supportato da GM07092 T32-34 e da un finanziamento alla University of North Carolina a Chapel Hill da Howard Hughes Medical Institute (HHMI) attraverso il Med in Grad iniziativa. PC è supportato da T32 CA009156.

Il pre-miRNA array profiling qPCR può essere impostato come completamente automatico con una libertà Tecan Evo robot (A) oppure a mano con la pipetta multicanale elettronica Matrix (B). 1) Preparare la master mix, piatti primer e campioni. <ol><li> Piastre di fondo contenente 186 coppie di primer in formato a 96 pozzetti (totale di 2 piastre) a 12:05 devono essere conservati a -80 ° C. Scongelare le piastre a temperatura ambiente, vortex e centrifugare brevemente prima dell'uso. </li><li> Per preparare il mix master, disgelo fuori SYBR Green 2x Mix PCR a temperatura ambiente. Ogni reazione usa mix 8ul maestro con primer 2ul. La composizione del master mix per ogni reazione viene mix SYBR 4UL, 3UL acqua grado PCR e 10-20 ng campione di DNA o cDNA. </li><li> Per la configurazione di ogni piatto fondo da 96 pozzetti, quattro tubi master mix sarà necessario. I campioni possono essere eseguiti 4 campioni per piastra (singlicate), 2 campioni per piastra (duplicato) o un singolo campione in quattro esemplari. </li><li> Preparare master mix unendo SYBR, acqua e campione in ciascuno di 4-2 ml provette Eppendorf. Ogni tubo deve contenere mix abbastanza principale per circa 100 reazioni, permettendo in eccesso per pipettaggio rifiuti. Vortex per mescolare. </li></ol> A. Configurazione di pre-miRNA test utilizzando il Freedom Tecan Evo robot. <ol><li> A seguito di inizializzazione del robot e il caricamento del programma Evoware, lavare tre volte con ogni 30mls per cancellare sistema di bolle d'aria che interferiscono con la precisione di pipettaggio. </li><li> Installazione della piattaforma robot sono i seguenti: <ul><li> Etichettati 384 pozzetti </li><li> 96 pozzetti fondo (1) </li><li> Master Mix </li><li> Una attraverso contenente il 2% di candeggina </li><li> Un sistema di contenitori pieni di liquidi </li><li> Rifiuti contenitore vuoto </li></ul></li><li> Iniziare a conduzione robot automatizzati selezionando la voce "Esegui" due volte. </li><li> Alla fine del programma, rimuovere 384 pozzetti e sigillare con LightCycler 480 foglio di tenuta e centrifugare brevemente. Luogo sigillato piastra da 384 pozzetti in posizione 1 dell 'hotel. </li><li> Passare al punto 2.2 e ripetere per piastra di fondo 2 con mescola nuovo padrone e una nuova piastra da 384 pozzetti. <ol><li> Inserire la piastra di tenuta in posizione 2 dell 'hotel. </li></ol></li><li> Aperto il nuovo programma per Evoware Caricamento del LightCycler dall'hotel e selezionare "Esegui" due volte. <ol><li> Freedom Evo caricherà automaticamente ogni piatto nel LightCycler ed eseguire il seguente SYBR-verde I / HRM programma dei cicli: Pre (1 ciclo): 50 ° per 5 minuti a velocità di rampa di 4,8 ° / sec 95 ° per 5 minuti a velocità di rampa di 4,8 ° / sec Amp (45 cicli): 95 ° per 15 secondi a velocità di rampa di 4,8 ° / sec 62 ° per 30 sec a velocità di rampa di 2,5 ° / sec (Single di acquisizione dati in questa fase) Curva di fusione: 95 ° per 5 secondi a velocità di rampa di 4,8 ° / sec 60 ° per 1 minuto a velocità di rampa di 2,5 ° / sec 95 ° continuo a velocità di rampa di 0,11 ° / sec con 5 acquisizioni per ° C Cool: 50 ° per 30 secondi a velocità di rampa di 25 ° / sec </li></ol></li></ol> B. Configurazione di pre-miRNA test utilizzando la pipetta multicanale elettronica Matrix: <ol><li> Il contenuto del tubo posto master mix 1 in un serbatoio. </li><li> Impostare la pipetta elettronica per aspirare 16ul di master mix con 2-8ul dispensare passi seguita da una fase di spurgo. </li><li> Per master mix 1, dispensare 8ul in ogni altro bene del 384 pozzetti (impostato a 384 pozzetti spaziatura punta), a partire dal pozzetto A1. (Cioè pozzi A1, C1, E1, ecc) Per il secondo 8ul dispensare, spostarsi in colonna 3 (ossia pozzi A3, C3, E3, ecc) e poi eliminare su un contenitore dei rifiuti e suggerimenti smaltire. </li><li> Seguite questo schema per i restanti 5 cicli fino a raggiungere ben A23. </li><li> Ripetere per master mix 2, (a cominciare da ben A2, C2, E2, ecc); Master Mix 3 (a partire B1 bene, D1, F1, ecc); Master Mix 4 (inizio in B2, D2, F2, ecc .). </li><li> Per aliquotting di piatto fondo, impostare pipetta elettronica per aspirare e dispensare 2ul 2ul con un seguito passo di spurgo. Dispensare 2ul di primer da colonna 1 a 96 pozzetti fondo (AH) nel 384-pozzetti, pozzi A1, C1, E1, ecc Purge su un contenitore dei rifiuti e suggerimenti smaltire. Ripetere l'operazione per pozzi A2, C2, E2, B1, D1, F1, e B2, D2, F2, ecc </li><li> Ripetere per le righe 2-12 di primer a 96 pozzetti, passando sopra ogni 2 colonne per ogni colonna fondo, fino a completa a 384 pozzetti è stato aliquotted. </li><li> Piastre di tenuta con un foglio di tenuta LightCycler e centrifugare brevemente. </li><li> Piastre in un luogo LightCycler 480 e del ciclo di piatti secondo le seguenti impostazioni utilizzando il SYBR Green I / formato di rilevamento gestione delle risorse umane: Pre (1 ciclo): 50 ° per 5 minuti a velocità di rampa di 4,8 ° / sec 95 ° per 5 minuti a velocità di rampa di 4,8 ° / sec Amp (45 cicli): 95 ° per 15 sec a velocità di rampadi 4,8 ° / sec 62 ° per 30 sec a velocità di rampa di 2,5 ° / sec (Single di acquisizione dati in questa fase) Curva di fusione: 95 ° per 5 secondi a velocità di rampa di 4,8 ° / sec 60 ° per 1 minuto a velocità di rampa di 2,5 ° / sec 95 ° continuo a velocità di rampa di 0,11 ° / sec con 5 acquisizioni per ° C Cool: 50 ° per 30 secondi a velocità di rampa di 25 ° / sec </li><li> Ripetere con fondo piatto 2, aliquotting in un piatto fresco da 384 pozzetti utilizzando miscele maestro preparati al momento. </li></ol> Segreti del successo: Una caratteristica importante quando si progetta array PCR è che tutte le 186 coppie di primer hanno la stessa temperatura di ricottura, in modo che il piatto può essere eseguito con le stesse impostazioni ottimale del programma eseguire PCR. Ogni nuovo array devono essere controllati utilizzando tre controlli prima della corsa dei campioni. Questi controlli sono: 1 pista di tutti i primer correre con acqua o 0,1 x TE per escludere la contaminazione primer. 1 pista di alternare acqua / TE e di controllo positivo, per assicurarsi che non riporto. 3 piste con lo stesso controllo positivo, per garantire la riproducibilità tra le esecuzioni. Mix master deve essere preparata, e piatti deve essere eseguito entro 24 ore per ottenere risultati ottimali Piastra di alluminio primer deve essere rimosso lentamente per ridurre il rischio di contaminazione tra pozzi. Quando si utilizza un robot con le punte fisse, lavare candeggina al 2% è necessario lavare le punte tra ogni semina, seguita da un filo d'acqua. Questo previene ed elimina riporto, che potrebbero contaminare i dati e portare a risultati inconcludenti. Dopo che un piatto è gestito attraverso il LightCycler, non dovrebbe essere riaperto nella stanza di impostazione della PCR. Questo aiuta a prevenire la contaminazione della PCR. Rappresentante dei risultati: qPCR risultati sono in genere rappresentati da valori di CT, come determinato dal software di analisi LightCycler. Un grande successo di solito consiste in una gamma di TA per i campioni, in genere tra 20-35 per i campioni che sono positivi. I campioni di acqua in una buona corsa sono sempre a un TC&gt; 40 e di qualunque campione o pozzi specifiche con un CT oltre 37 sono considerati negativi o non rilevato. Come regola generale, i campioni ottenendo un CT di &lt;10 sono inaffidabili e sono esclusi da ulteriori analisi. Ci sono diversi modi per analizzare i dati qPCR e l'inserimento dei controlli interni nei nostri test aiuta a controllare per la variazione di ingresso del campione. La pre-miR serie comprende un manuale di controllo U6, che è spesso utilizzato come gene di riferimento per normalizzare i valori di CT da campioni diversi. Questo valore normalizzato viene indicato come il delta CT valore (DCT). I risultati sono spesso rappresentate come le prime CT, il valore dCT o possono essere ulteriormente analizzati per valori standardizzati. Nella figura 1, l'analisi della piena pre-microRNA array di quattro campioni diversi da un esperimento timecourse è presentato in formato carta di calore. L'espressione relativa di ogni pre-microRNA è mostrato e tre grandi, gruppi distinti emerse. La maggior parte dei pre-MIRS analizzato subito piccole variazioni insignificanti come previsto (Figura 1A). Tuttavia, una piccola porzione di pre-microRNA sono risultati significativamente diminuiti (Figura 1B) o aumentato notevolmente (Figura 1C) per tutto l'esperimento timecourse. I livelli di espressione di ogni pre-microRNA sono stati normalizzati al timepoint 0h (campione 1) come un livello base. In alcuni casi, è possibile notare che alcune delle cluster pre-microRNA anche raggruppare insieme nell'analisi heatmap (es: let-7, Figura 1B). A seconda della sperimentazione, i cluster possono emergere che dipendono da un'infezione virale, tipo di espressione di cellule specifiche di pre-microRNA o pre-MIRS che sono regolati da una molecola comune o via di segnalazione. Il test di pre-microRNA che abbiamo sviluppato include anche una serie di note virale pre-microRNA e geni codificati da Sarcoma di Kaposi associato Herpesvirus (KSHV) e Epstein Barr Virus (EBV) in aggiunta alle pre-umano MIRS. Questi possono essere utilizzati come controlli positivi o negativi, a seconda della linea cellulare e lo stato virale dei campioni utilizzati. Nella figura 2, il TA media da un KSHV negativo campione eseguito in quadruplicato sono mostrati. È importante sottolineare che KSHV LANA non è stato rilevato in questo campione l'array qPCR altamente sensibile. Tuttavia, U6 - il nostro controllo interno e di let-7 bis - altamente espresso umano pre-microRNA, sono stati espressi a livelli rilevabili. Infine, come previsto, il controllo negativo della PCR acqua di grado non ha dato un prodotto qPCR. Un altro indicatore di una corsa qPCR di successo è una buona analisi della curva di fusione, che può dare informazioni in potenziale contaminazione nei campioni. Per stabilire una temperatura di fusione, la piastra è riscaldata lentamente dopo la PCR è completa. Come i filamenti di DNA separati, SYBR green viene rilasciato, e il segnale di fluorescenza diminuisce. La temperatura alla quale questo drop verifica viene rappresentata graficamente, ed è conosciuta come la temperatura di fusione del campione. In base on la sequenza del DNA, i campioni fondono a temperature diverse le une dalle altre e dal controllo delle acque negativi, che non dovrebbe avere una temperatura di fusione in quanto non DNA è presente. I prodotti di PCR di ciascuna coppia di primer dovrebbe sciogliersi a temperature simili. Per esempio, la Figura 3 mostra l'analisi della curva di fusione per due primers diversi utilizzando lo stesso campione in duplicato. E 'chiaro che la temperatura di fusione è diversa per le due coppie di primer, ma il campione si sta sciogliendo ad una temperatura esattamente lo stesso per ogni replica. Segni di un campione di cattivo o potenzialmente contaminati possono includere diversi picchi di fusione, il che suggerisce la presenza di due diverse fonti di input. <img src="/files/ftp_upload/2210/2210fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Pre-microRNA firme emergono attraverso il profiling usando un romanzo qPCR a base di array. La media è stata calcolata deltaCTU6 e valori standardizzati sono stati caricati nel software ArrayMinerTM, ottenendo 3 gruppi distinti visualizzato come heatmaps. (A) pre-microRNA con piccoli cambiamenti di espressione sono mostrati. Pre-microRNA i cui livelli sono risultati significativamente diminuiti (B) o aumentata (C) sono inoltre riportati. Blu corrisponde ad abbassare i livelli di espressione, mentre il rosso rappresenta un aumento dei livelli di espressione. <img src="/files/ftp_upload/2210/2210fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. Inclusione dei controlli interni nella qPCR-based pre-microRNA array. I valori grezzi CT per 3 geni diversi e un modello di controllo non vengono visualizzati. U6 è usato come un controllo interno positivo mentre PCR H2O serve come il nostro controllo negativo. Let-7a-1-1 è un microRNA normalmente espressa in molti tipi cellulari diversi, mentre KSHV LANA può essere utilizzato sia come controllo positivo o negativo, in base allo stato virale della linea di cellule o tessuti utilizzati. <img src="/files/ftp_upload/2210/2210fig3.jpg" alt="Figura 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 3"> Figura 3. Picco di fusione analisi di pre-microRNA primer e la mancanza di contaminazione dei campioni. Le curve di fusione sono stati ottenuti utilizzando l'analisi chiamando Tm nel software LightCycler. Due primer diversi (Primer A e B) per lo stesso campione in doppio sono mostrati. La temperatura di fusione per ogni primer è distinto. Tuttavia, il campione ha un solo picco, dimostrando la mancanza di contaminazione dei campioni.

<ol><li>Bustin, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+MIQE+Guidelines%3A+Minimum+Information+for+Publication+of+Quantitative+Real-Time+PCR+Experiments%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Chem%22%5BJournal%5D)">The MIQE Guidelines: Minimum Information for Publication of Quantitative Real-Time PCR Experiments.</a> Clinical Chem. 55 (4), 611-622 (2009).</li>
<li>Frégeau, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Automated+Processing+of+Forensic+Casework+Samples+using+Robotic+Workstations+Equipped+with+Nondisposable+Tips+-+Contamination+Prevention%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Forensic+Sci%22%5BJournal%5D)">Automated Processing of Forensic Casework Samples using Robotic Workstations Equipped with Nondisposable Tips - Contamination Prevention.</a> J. Forensic Sci. 53 (3), 53-533 (2008).</li>
<li>O'hara, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pre-micro+RNA+Signatures+Delineate+Stages+of+Endothelial+Cell+Transformation+in+Kaposi+Sarcoma%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Pathog%22%5BJournal%5D)">Pre-micro RNA Signatures Delineate Stages of Endothelial Cell Transformation in Kaposi Sarcoma.</a> PLoS Pathog. 5 (4), e1000389-e1000389 (2009).</li>
</ol>

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

QPCR è un saggio altamente sensibile che può essere utilizzato per confrontare i livelli di espressione genica tra i campioni in studio, e di determinare positività in caso di virus. Il vantaggio di utilizzare array qPCR è la possibilità di eseguire molti primer (nel nostro caso, 186 coppie di primer) per ogni campione in un breve periodo di tempo. Utilizzando un robot pipettamento come la libertà Tecan Evo, la quantità di tempo necessario per impostare un esperimento up può essere ulteriormente ridotto, e l&#39;accurat...

<table><tbody><tr><td>Freedom Evo 150</td><td>Tecan Group Ltd.</td><td>30017587</td><td></td></tr><tr><td>Pipetta multicanale elettronica Matrix</td><td>Thermo Fisher Scientific, Inc.</td><td>2001-MTX</td><td>(o qualsiasi pipetta multicanale Thermo Scientific comparabile in grado di erogare i volumi descritti sopra)</td></tr><tr><td>Punte con filtro Matrix Integrity, sterili</td><td>Thermo Fisher Scientific, Inc.</td><td>7435</td><td>(o punte comparabili per la multicanale utilizzata)</td></tr><tr><td>Lightcycler 480 SYBR Green 1 Master</td><td>Roche Group</td><td>04 707 516 001</td><td></td></tr><tr><td>Lightcycler 480 Instrument II</td><td>Roche Group</td><td>05015243001</td><td>versione a 384 pozzetti</td></tr><tr><td>Piastra multi-pozzetto Lightcycler 480 da 384, bianca</td><td>Roche Group</td><td>04729749001</td><td></td></tr><tr><td>Foil sigillante per LightCycler 480</td><td>Roche Group</td><td>04729757001</td><td></td></tr><tr><td>Software per analisi multipiastra LightCycler 480</td><td>Roche Group</td><td>05075122001</td><td></td></tr><tr><td>Disinfettante Eliminase</td><td>Decon Laboratories</td><td>04-355-31</td><td></td></tr></tbody></table>

profilatura di pre-micro-rna e microrna con quantitative real-time pcr (qpcr) array

Profiling of Pre-micro RNAs and microRNAs using Quantitative Real-time PCR (qPCR) Arrays

Quantitativa real-time PCR (QPCR) è emerso come uno strumento preciso e prezioso nel profilo livelli di espressione genica. Uno dei suoi vantaggi è un limite di rilevazione più basso rispetto ad altri metodi di profili di espressione genica durante l&#39;utilizzo di piccole quantità di ingresso per ciascun test. Automatizzate di configurazione qPCR ha migliorato questo settore, consentendo una maggiore riproducibilità. La sua configurazione comoda e rapida permette di high-throughput esperimenti, che consente la profilazione di molti geni diversi simultaneamente in ogni esperimento. Questo metodo insieme ai controlli piastra interna riduce anche variabili sperimentali comuni ad altre tecniche. Abbiamo recentemente sviluppato un test qPCR per la profilatura di pre-microRNA (pre-miRNA) utilizzando un set di 186 coppie di primer. I microRNA sono emersi come una nuova classe di piccoli RNA non codificanti, con la possibilità di regolare molti mRNA target a livello post-trascrizionale. Questi piccoli RNA vengono prima trascritti dalla RNA polimerasi II come un miRNA primario (pri-miRNA) trascrizione, che viene poi tagliata in miRNA precursore (pre-miRNA). Pre-miRNA vengono esportati nel citoplasma dove Dicer unirà il ciclo tornante cedere miRNA maturi. Aumenti dei livelli di miRNA possono osservare sia il precursore e livelli di miRNA maturo e profilatura di entrambe queste forme possono essere utili. Ci sono diversi test disponibili in commercio per il miRNA maturo, ma il loro costo elevato potrebbe scoraggiare i ricercatori questa tecnica di profilatura. Qui, si discute una soluzione conveniente, affidabile, SYBR metodo basato qPCR di profili pre-miRNA. Cambiamenti nei livelli di pre-miRNA spesso riflettere i cambiamenti miRNA maturo e può essere un utile indicatore di espressione miRNA maturi. Tuttavia, profilazione simultanea di entrambi i pre-miRNA e miRNA maturo può essere ottimale in quanto possono contribuire le informazioni ridondanti e permettono di percepire il trattamento di microRNA. Inoltre, la tecnica qui descritta può essere ampliata fino a comprendere la profilazione dei set di librerie per altri percorsi specifici o agenti patogeni.

Dimostreremo la configurazione e l&#39;analisi di pre-microRNA 96-array e per QPCR usando un robot così come a mano con una pipetta multicanale Thermo Scientific Matrix.

Profilatura di pre-micro-RNA e microRNA con Quantitative Real-time PCR (qPCR) Array

La PCR quantitativa in tempo reale (qPCR) si è affermata come uno strumento accurato e prezioso per la profilazione dei livelli di espressione genica. Uno dei suoi numerosi vantaggi è un minore...

L'obiettivo generale di questa procedura è consentire una configurazione rapida e affidabile, automatizzata, di array basati su QPCR. Questo risultato si ottiene innanzitutto preparando i set di primer per l'array e allestendo i mix master dei campioni da analizzare. Successivamente, si utilizza un sistema automatizzato robotico per l’allestimento della PCR oppure un sistema di pipette elettroniche a matrice per distribuire con precisione il mix master del campione e i set di primer in ciascun pozzetto di una piastra da 384 pozzetti.Dopo aver preparato le reazioni PCR in piastre a 384 pozzetti, queste vengono eseguite utilizzando il programma PCR basato sul Light Cycler Four 80 Cyber. L'ultimo passaggio della procedura consiste nell'analizzare i dati di QPCR e determinare i livelli di espressione relativi per ciascuna coppia di primer testata, ognuna delle quali mira a un mRNA specifico. In definitiva, è possibile ottenere risultati che mostrano variazioni nell'espressione di ampi insiemi di mRNA.Array specifici sviluppati appositamente possono quindi mirare a interi profili di microRNA precursore, a percorsi specifici o a molecole chiave nell'infezione virale mediante profilazione basata su QPCR. Salve, sono Dirk DMA del Dipartimento di Microbiologia e Immunologia dell'Università del North Carolina a Chapel Hill. Oggi vi mostreremo come impostare una QQPC rra in tempo reale e vi illustreremo due metodi.Uno utilizza una pipetta irregolare e l'altro un robot. Utilizziamo questa tecnologia per misurare i pre-microRNA e i microRNA maturi nei tumori umani. La dimostrazione di oggi sarà effettuata da Pauline Chu e Kristen bu.Iniziamo. Per iniziare questa procedura, recuperare le piastre con primer contenenti 186 coppie di primer in un formato a 96 pozzetti a 0,5 picoMoli, conservate a meno 20 gradi Celsius.Dopo aver scongelato le piastre a temperatura ambiente, vortexarle e centrifugarle brevemente. Scongelare anche il mix PCR con cyber green a temperatura ambiente. Per l'allestimento di ciascuna piastra di primer a 96 pozzetti, saranno necessarie quattro provette con mix master. Preparare il mix master combinando quattro microlitri di mix con cyber green, tre microlitri di acqua per PCR e da 10 a 20 nanogrammi di DNA o cDNA campione per reazione in ciascuna delle quattro provette Eppendorf da due millilitri.Ogni tubo deve contenere una quantità sufficiente di mix master per circa 100 reazioni, prevedendo un eccesso per compensare gli scarti durante la pipettaggio. Vortexare i tubi einor per mescolare. Iniziare l'allestimento del saggio per micro RNA precursore utilizzando il robot Tecan EVO Freedom, inizializzando il robot e caricando il programma EVO wear.Quindi, sciacquare il robot tre volte con 30 millilitri di liquido di sistema per eliminare le bolle d'aria che potrebbero interferire con la precisione della pipettaggio. Successivamente, configurare la piattaforma robotica includendo una piastra da 384 pozzetti e una piastra di primer da 96 pozzetti. Il mix master, un serbatoio contenente ipoclorito al 2%, un contenitore di liquido pieno e un contenitore di rifiuti vuoto.Avviare l'esecuzione automatizzata del robot selezionando due volte "esegui" alla fine del programma. Rimuovere la piastra a 384 pozzetti e sigillarla con pellicola per LightCycler da 80 pozzetti. Successivamente, centrifugare la piastra.Posizionare brevemente la piastra sigillata a 384 pozzetti nella posizione uno dell'hotel. Ripetere quindi questo processo per la piastra primer due con nuove miscele master e una nuova piastra a 384 pozzetti. Posizionare la piastra a 384 pozzetti risultante, sigillata, nella posizione due dell'hotel.Aprire un nuovo programma EVO wear per il caricamento del ciclatore termico dall'hotel e impostare i parametri di ciclaggio. Quindi selezionare esegui due volte. Freedom Evo caricherà automaticamente ogni piastra nel ciclatore termico ed eseguirà il programma di ciclaggio HRM con cyber green.Una volta completato, esaminare e analizzare i risultati come descritto nel protocollo scritto, come alternativa all'uso del robot. Una pipetta elettronica multicanale a matrice può essere utilizzata per iniziare a trasferire il contenuto del tubo della miscela madre in un serbatoio.Impostare la pipetta elettronica per aspirare 16 microlitri di master mix con due erogazioni successive da otto microlitri seguite da un passaggio di spurgo. Dopo aver impostato la pipetta, aspirare 16 microlitri di master mix e iniziare a dispensarli in una piastra a ruota da 384 pozzetti. Erogare i primi otto microlitri in ogni altra riga della colonna uno, utilizzando le righe da A a O, lasciando la colonna successiva vuota.Dispensare i successivi otto microlitri nelle stesse righe della colonna tre. Quindi eseguire la purga sopra un contenitore di rifiuti e smaltire le punte seguendo questo schema, lasciando righe e colonne alternate. Dispensare lungo la piastra per altri cinque cicli per pipettare il master mix due.Utilizzare le stesse righe del master mix uno, ma iniziare dalla colonna due. Ripetere questa procedura per i master mix tre e quattro, iniziando rispettivamente dalle colonne uno e due, ma questa volta utilizzando la rosa B per la citazione del primer plate da parte di P.Her. Impostare una pipetta elettronica per aspirare due microlitri ed erogare due microlitri con un passaggio di spurgo da eseguire successivamente.Trasferire due microlitri di primer dalla colonna uno, riga A ad H, di una piastra primer a 96 pozzetti a ogni altra colonna dispari della piastra a 384 pozzetti, scaricando sopra un contenitore di rifiuti e smaltendo le punte. Ripetere questo schema per il quarto primer per le tre miscele master rimanenti delle colonne uno e due. Proseguire quindi con questo processo per le colonne da due a dodici della piastra primer a 96 pozzetti, spostandosi ogni due colonne nella piastra a 384 pozzetti per ogni colonna di primer.Successivamente, sigillare le piastre con un coperchio per light cycler, della pellicola di alluminio e centrifugare. Dopo una breve centrifugazione, posizionare le piastre in un light cycler four 80 ed eseguire i cicli utilizzando il formato di rilevamento HRM con cyber green one.Utilizzando le stesse condizioni di ciclaggio di prima, ripetere questa procedura utilizzando la piastra di primer due Eloqua in una nuova piastra da 384 pozzetti, impiegando miscele master appena preparate. Le firme di micro RNA precursori emergono tramite profilazione mediante un array basato su QPCR innovativo. Il delta CT medio, normalizzato rispetto a U sei, è stato calcolato e i valori standardizzati sono stati caricati nell'array.Software minore che produce tre cluster distinti visualizzati come mappe termiche. L'espressione relativa di ciascun micro RNA precursore è mostrata; il rosso e il blu rappresentano rispettivamente un aumento e una diminuzione dell'espressione relativa. L'intensità del colore indica il grado di variazione dell'espressione.La maggior parte dei microRNA precursori ha subito piccole variazioni non significative, come previsto. Tuttavia, una piccola porzione di microRNA precursori è aumentata significativamente nel corso dell'esperimento temporale. Inoltre, il livello relativo di alcuni microRNA precursori è diminuito in modo drammatico.In alcuni casi, si raggruppano anche insieme nell'analisi della mappa termica. A seconda dell'esperimento, possono emergere gruppi legati all'infezione virale, all'espressione specifica del tipo cellulare di microRNA precursori o a microRNA precursori regolati da una molecola comune o da un percorso di segnalazione.I valori medi delle soglie di ciclo o ct di un campione negativo per il virus dell'herpes associato al sarcoma di Posey, analizzato in quadruplicato, sono mostrati. È importante notare che l'antigene nucleare associato alla latenza del virus dell'herpes umano 8, o KSHV Lana, non è stato rilevato in questo campione mediante l'array QPCR altamente sensibile. Tuttavia, sia il controllo interno U sei che let sette a, un microRNA umano precursore altamente espresso, erano espressi a livelli rilevabili.Infine, come previsto, il controllo negativo con acqua di grado PCR non ha prodotto alcun prodotto A-Q-P-C-R. Analisi della curva di denaturazione per due primer diversi, utilizzando lo stesso duplicato di campionamento, è mostrata.È chiaro che la temperatura di fusione è diversa per le due coppie di primer, ma il campione fonde esattamente alla stessa temperatura in ogni replicato. Segni di un campione difettoso o potenzialmente contaminato possono includere diversi picchi di fusione, che suggeriscono la presenza di due diverse fonti di materiale in ingresso. Vi abbiamo appena mostrato come impostare un esperimento di QPCR in tempo reale utilizzando un robot.È importante che tu includa tutti i controlli e il maggior numero possibile di geni di controllo. Grazie per aver guardato e buona fortuna con i tuoi esperimenti.

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Descriviamo un protocollo di PCR in tempo reale al profilo microRNA nel fluido cerebrospinale (CSF). Con l'eccezione di protocolli di estrazione di RNA, la procedura può essere estesa a RNA estratto da altri fluidi corporei, cellule coltivate, ei campioni di tessuto.

Liquido cerebrospinale MicroRNA profiling Utilizzando quantitativa Real Time PCR

Molecular segnalazione sia attraverso gli estrogeni e microRNA sono fondamentali nello sviluppo del cancro al seno e la crescita. Estrogeni attiva i recettori degli estrogeni, che sono fattori di trascrizione. Molti fattori di trascrizione in grado di regolare l'espressione dei microRNA, e microRNA regolati dagli estrogeni possono essere profilato utilizzando diverse tecniche su larga scala.

Profiling di microRNA regolati dagli estrogeni in cellule di carcinoma mammario

MicroRNA circolanti sono recentemente emersi come biomarcatori promettenti e innovativi per vari tipi di cancro e di altre malattie. L'obiettivo di questo articolo è quello di discutere di tre diverse piattaforme di PCR real-time sonda-based e metodi che sono disponibili per quantificare e determinare l'abbondanza dei microRNA circolanti.

Base-Probe Real-time PCR Approcci per la misurazione quantitativa dei microRNA

Viene descritto un metodo sensibile e accurato per la quantificazione di microRNA privi di cellule utilizzando una chimica basata su coloranti e una tecnologia PCR digitale a goccioline.

Di circolazione MicroRNA Quantificazione Utilizzando DNA-binding Dye Chimica e di gocce Digital PCR

Questo rapporto descrive un protocollo per misurare i livelli assoluti di miRNA al plasma, usando trascrizione d'inversione quantitativa Real-Time PCR, con o senza pre-amplificazione. Questo protocollo offre una migliore comprensione della quantità di plasma Mirna e permette la valutazione qualitativa dei dati corrispondenti da diversi studi o laboratori.

Quantificazione assoluta dei livelli di MicroRNA del Plasma nella scimmia cynomolgus, mediante trascrizione d'inversione quantitativa Real-Time PCR

Qui descriviamo un metodo per valutare l'espressione di polmone di Mirna che sono preveduti per regolare i geni infiammatori utilizzando topi esposti all'ozono o aria filtrata nelle diverse fasi del ciclo estrale.

Polmone microRNA Profiling attraverso il ciclo estrale in topi esposti a ozono

Qui viene presentato un protocollo quantitativo basato sulla reazione a catena della polimerasi in tempo reale per la determinazione del contenuto di micro-RNA nativo (assoluto/relativo) delle particelle di lipoproteina. Inoltre, è dimostrato un metodo per aumentare il livello di micro-RNA, nonché un metodo per determinare il tasso di captazione cellulare delle particelle di lipoproteina.

Arricchimento delle particelle di lipoproteina nativa con microRNA e successiva determinazione del loro contenuto di microRNA assoluto/relativo e della loro velocità di trasferimento cellulare

Impara a configurare array qPCR per il profiling di pre-microRNA e microRNA utilizzando metodi automatizzati e manuali. Questa tecnica consente analisi accurate dell'espressione genica in biologia molecolare.

Profilatura di pre-micro-RNA e microRNA con Quantitative Real-time PCR (qPCR) Array

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