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Inizia con la frazione totale di membrana di un batterio Gram-negativo, comprese le vescicole della membrana interna ed esterna, sospese in un saccarosio a bassa densità che preserva l'integrità strutturale.
Per separare le vescicole della membrana, aggiungere in sequenza soluzioni di saccarosio ad alta e media densità in una provetta per ultracentrifuga.
Quindi, aggiungi la frazione di membrana e il saccarosio a bassa densità per creare un gradiente di saccarosio discontinuo.
Ultracentrifuga per separare le vescicole in base alla loro densità.
Le vescicole della membrana interna meno dense formano uno strato nella parte superiore.
Le vescicole della membrana esterna più dense, ricche di lipopolisaccaridi e proteine, formano una banda all'interfaccia di soluzioni di saccarosio a media e alta densità.
Raccogliere lo strato interno della membrana e scartare la soluzione sfumata, lasciandone una piccola quantità.
Quindi, raccogli lo strato esterno della membrana.
Aggiungere un buffer di archiviazione a ogni frazione per la stabilizzazione.
Centrifugare per separare le vescicole e rimuovere il surnatante.
Risospendere le vescicole di membrana purificate, omogeneizzarle e conservarle a basse temperature per ulteriori analisi.
Per preparare la sfumatura di saccarosio, tenere un tubo Open-Top in polipropilene o Ultra-clear in posizione leggermente inclinata.
Aggiungere lentamente due millilitri della soluzione di saccarosio a densità più elevata. Quindi aggiungere quattro millilitri della soluzione di saccarosio a bassa densità. Quando si prepara il gradiente di densità, aggiungere lentamente la soluzione di saccarosio per evitare di mescolare gli strati.
Gli strati di saccarosio devono essere leggermente visibili e apparire generalmente definiti. Quindi, aggiungere la frazione totale di membrana che è stata precedentemente risospesa in un millilitro di soluzione di saccarosio isopicnico a bassa densità. Infine, riempire il resto del tubo aggiungendo circa sei millilitri della soluzione isopicnica a gradiente di saccarosio a bassa densità.
Ultracentrifugare i campioni utilizzando un rotore a secchiello oscillante a 288.000 volte G e quattro gradi Celsius per 16-23 ore. Tagliare l'estremità di un puntale per pipetta P1000 a circa cinque millilitri dalla punta. Al termine della centrifugazione, utilizzare la pipetta per rimuovere lo strato marrone superiore dalla provetta.
Trasferire questo strato, che contiene la frazione interna della membrana, in un flacone di policarbonato per l'ultracentrifugazione. Lasciare circa due millilitri della soluzione di saccarosio sopra l'interfaccia tra il saccarosio al 53% e il saccarosio al 73% per garantire che la frazione inferiore della membrana esterna, bianca, non contamini in modo incrociato la frazione della membrana interna. Sempre utilizzando un puntale per pipetta P1000 con l'estremità rimossa, rimuovere lo strato esterno della membrana e trasferirlo in un flacone di policarbonato.
Riempire lo spazio vuoto rimanente della bottiglia di policarbonato con un tampone di stoccaggio a membrana isolato e mescolare per inversione o pippetting. Conservare i campioni sul ghiaccio. Per raccogliere le membrane, ultracentrifugare le bottiglie di policarbonato a 184.500 volte G e quattro gradi Celsius per un'ora.
Infine, scartare i surnatanti e aggiungere da 500 a 1.000 microlitri di tampone di conservazione. Risospendere le membrane mediante omogeneizzazione Dounce. Raccogliere i campioni in provette da microcentrifuga da due millilitri.