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Prelevare una piastra a più pozzetti contenente una coltura di cellule epiteliali di mammifero.
Nei pozzetti del test, aggiungere un agente patogeno batterico insieme a perle polimeriche accoppiate a proteine di superficie batteriche.
Nei pozzetti di controllo, aggiungere l'agente patogeno e le microsfere prive di proteine batteriche di superficie. Incubare.
Nei pozzetti del test, le perle imitano la superficie batterica e competono con l'agente patogeno per legarsi all'acido fosfatidico della membrana cellulare epiteliale, riducendo l'adesione batterica.
Nei pozzetti di controllo, le perle non influiscono sull'attaccamento batterico.
Rimuovere il supporto e lavare con tampone per eliminare i componenti non legati.
Incubare con un detergente non ionico per lisare le cellule, rilasciando batteri e perle attaccati alla membrana.
Pipettare il lisato per creare una sospensione omogenea e diluire in serie l'omogenato utilizzando il tampone.
Trasferire le diluizioni su piastre di agar, incubare per consentire la formazione di colonie e contare le colonie.
La piastra di prova mostra meno colonie rispetto ai controlli, indicando una riduzione delle interazioni batterico-ospite.
Prepara i terreni di infezione diluendo le colture batteriche in DMEM incolore senza additivi.
Preriscaldato a 37 gradi Celsius contenente il 10% di sospensione di perle da volume a volume. Per ottenere un MOI di 10, preparare un millilitro per pozzetto e dal 10 al 20% di volume in eccesso per campione. Rimuovere il vecchio terreno dai pozzetti e lavare le cellule HeLa coltivate aggiungendo a ciascun pozzetto un millilitro di preriscaldamento PBS sterile a 37 gradi Celsius. Rimuovere il PBS e aggiungere un millilitro di terreno di infezione per pozzetto. Aggiungere soluzioni contenenti perle di controllo e batteri come controlli positivi e perline di adesione e nessun batterio come controlli negativi.
Aggiungere DMEM contenente lo 0,1% di Triton X 100 come controlli di lisi.
Incubare la piastra in un incubatore per colture tissutali a 37 gradi Celsius per il tempo desiderato.
Le misurazioni dell'adesione batterica vengono effettuate un'ora dopo l'infezione. Rimuovere il terreno dallo strato cellulare e lavare accuratamente lo strato cellulare con PBS sterile preriscaldato per rimuovere eventuali cellule non attaccate. Lavare almeno tre o quattro volte con un millilitro di PBS ogni volta. Lisi le cellule ospiti aggiungendo a ciascun pozzetto un millilitro di una soluzione sterile di Triton X 100 all'1% in volume in PBS. Incubare la piastra a 37 gradi Celsius per cinque minuti.
Pipettare ogni campione su e giù più volte prima di trasferire il contenuto di ciascun pozzetto in provette separate da 1,5 millilitri. Preparare diluizioni seriali decuplicate dei campioni in PBS sterile. Piastra 100 microlitri di ciascun campione su agar LB marino e distribuisci utilizzando un divaricatore cellulare. Ottimizza la diluizione da impiattare in base ai ceppi batterici e al punto temporale.
Per questa configurazione sperimentale, una diluizione da 10 a 5 o da 10 a sesta piega darà un numero adeguato di CFU. Incubare le piastre a 37 gradi Celsius durante la notte. Il giorno seguente, enumerare i batteri in base al conteggio delle colonie.