JoVE Encyclopedia of Experiments
Microbiologia
0 visualizzazioni • 3:21 min • September 26th, 2025
Prendi un piatto contenente una larva di pesce zebra anestetizzata.
Applicare una goccia di agarosio a basso punto di fusione sulla larva e posizionarla delicatamente lateralmente per consentire l'accesso intestinale durante l'iniezione.
Ora, raffreddare brevemente l'agarosio per solidificarlo, immobilizzando così la larva.
Aggiungere terreni contenenti un agente anestetico per mantenere la larva sotto anestesia.
Successivamente, prendi una sospensione di Clostridioides difficile marcato in modo fluorescente, un batterio patogeno, e aggiungi un colorante tracciante per facilitare il monitoraggio dell'iniezione.
Caricare questa miscela in un ago per microiniezione e montare l'ago su un micromanipolatore.
Sotto uno stereomicroscopio, posizionare l'ago con un angolo diretto verso l'intestino larvale.
Quindi, inserire delicatamente la punta dell'ago nel lume intestinale.
Iniettare i batteri direttamente nel lume e confermare l'avvenuta erogazione utilizzando il colorante tracciante. Quindi, ritrarre l'ago.
Utilizzando la microscopia a fluorescenza, confermare la localizzazione di Clostridioides difficile nell'intestino larvale.
Per prima cosa, metti una goccia di agarosio a basso punto di fusione allo 0,8% sulle larve di pesce zebra in una capsula di Petri per coprire. Regolare delicatamente le larve in posizione laterale. Mettere la capsula di Petri sul ghiaccio per 30-60 secondi per consentire all'agarosio a basso punto di fusione di solidificarsi.
Aggiungere il 30% di terreno di Danieau contenente dallo 0,02% allo 0,04% di tricaina per coprire l'agarosio. Per preparare la soluzione iniettabile, aggiungere un microlitro di rosso fenolo allo 0,5% in soluzione PBS in nove microlitri di inoculo di Clostridioides difficile colorato con colorante. Caricare un ago per microiniezione calibrato con la soluzione iniettabile utilizzando un Microloader.
Montare l'ago caricato in un micromanipolatore e posizionarlo sotto uno stereomicroscopio. Regolare la pressione di iniezione tra 600 e 900 ettopascal. Impostare il tempo di iniezione da 0,1 a 0,3 secondi per ottenere da 0,5 a 1,0 nanolitri.
Posizionare l'ago nel micromanipolatore con un angolo di circa 45 gradi, puntando verso le larve incorporate. Posizionare la punta dell'ago sopra il tratto gastrointestinale, vicino al poro urogenitale. Forare l'agarosio, quindi il muscolo con la punta dell'ago.
Quindi inserirlo nel lume intestinale e iniettare da 0,5 a 1,0 nanolitri di Clostridioides difficile. Utilizzare un microscopio a fluorescenza per monitorare le larve iniettate e utilizzare una punta flessibile del Microloader per prelevare le larve iniettate correttamente per l'imaging confocale.
Questo articolo descrive un metodo per iniettare Clostridioides difficile marcato con fluorescenza nella luce intestinale di larve di pesce zebra anestetizzate. La tecnica permette la visualizzazione della localizzazione batterica mediante microscopia a fluorescenza.
L'iniezione microlocalizzata di batteri in larve di zebrafish permette una modellizzazione precisa delle interazioni ospite-patogeno in un sistema vertebrale vivente. Questo approccio supporta la validazione precoce degli obiettivi e la riduzione del rischio meccanicistica nei programmi per le malattie infettive, fornendo una visualizzazione diretta e una quantificazione della localizzazione batterica. Il metodo aumenta la fiducia predittiva nella ricerca traslazionale e nel triage del portafoglio nella scoperta di agenti anti-infettivi.
Questo metodo di microiniezione si integra nel percorso continuo dalla scoperta precoce alla fase preclinica nella ricerca sulle malattie infettive, collegando i risultati ottenuti in vitro con la validazione in vivo.
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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026