Studio della risposta batterica all'etilene utilizzando un composto che rilascia etilene

0 visualizzazioni4:20 min • September 26th, 2025

Iniziare con una piastra a più pozzetti contenente terreni di crescita pre-inoculati con batteri produttori di cellulosa.

Nel pozzetto trattato, il terreno è integrato con acido 2-cloroetilfosfonico (CEPA).

Sigillare la piastra per evitare lo scambio di gas e incubare.

Durante l'incubazione, il CEPA si idrolizza e rilascia etilene, una molecola gassosa.

L'etilene attiva la cellulosa sintasi batterica, che utilizza il glucosio UDP citosolico per sintetizzare la cellulosa.

Nel tempo, i batteri estrudono la cellulosa attraverso la loro membrana.

Questo favorisce l'autoassemblaggio batterico all'interfaccia aria-liquido, formando un biofilm galleggiante a base di cellulosa, o pellicola.

Dopo l'incubazione, trasferire le pellicole in una piastra multipozzetto fresca. Aggiungere una soluzione alcalina e incubare a una temperatura più alta per lisare le cellule.

Rimuovere la soluzione alcalina. Lavare ripetutamente con agitazione per rimuovere i detriti cellulari trattenendo la cellulosa.

Asciugare e pesare le pellicole. Un peso secco più elevato nei campioni trattati con CEPA rispetto al controllo indica una maggiore produzione di cellulosa batterica in risposta all'etilene.

Il test della pellicola è uno strumento di analisi standard per la produzione di cellulosa batterica. L'analisi morfologica e l'PH sono dettagliate nel protocollo di testo. In preparazione, raccogliere le cellule dalle colture starter in triplicato e quantificare le cellule utilizzando una camera di conteggio Petroff-Hauser.

Quindi, preparare quattro master mix di terreno con diverse concentrazioni di CEPA. Per ogni master mix, aliquotare 60 millilitri di terreno a pH 7 SH e aggiungere 120 microlitri di soluzione madre di CEPA 0, 5, 50 o 500 millimolari per ottenere concentrazioni finali di CEPA di 0, 0,01, 0,1 o 1,0 millimolari. Mescolare questi terreni facendo roteare i flaconi.

È necessario un set di terreni per ciascuno dei triplicati e un quarto set è necessario per funzionare come controllo sterile. Quindi, dividi ogni preparazione media da 60 millilitri in quattro aliquote da 14 millilitri. Quindi, pre-raffreddare le aliquote da 14 millilitri prima di inocularle con le rispettive colture starter per una concentrazione finale di 100.000 cellule per millilitro.

Tenere tutte le provette inoculate sul ghiaccio per prevenire la produzione di cellulosa. Utilizzare le restanti aliquote da 14 millilitri per pozzetti di controllo sterili. Ora, da ogni master mix da 14 millilitri, caricare due aliquote da millilitri in sei pozzetti di una piastra sterile da 24 pozzetti per un totale di quattro piastre caricate per coltura starter analizzata.

Sigillare accuratamente le piastre con pellicola di paraffina e incubarle staticamente per sette giorni a 30 gradi Celsius. Per raccogliere una pellicola dalla piastra, premere un lato della pellicola per sollevare il bordo opposto e raccoglierla con una pinza.

Quindi, trasferire individualmente le pellicole nei pozzetti di una piastra a sei pozzetti. Trattali con 12 millilitri di idrossido di sodio normale 0,1 a 80 gradi Celsius per 20 minuti per lisare le cellule. Quindi, rimuovere l'idrossido di sodio e neutralizzare le pellicole trattate lavandole accuratamente con 12 millilitri di acqua ultra pura per 24 ore con agitazione in una piastra a sei pozzetti.

Durante questa incubazione, cambiare l'acqua ogni sei ore. Al termine dell'incubazione, le pellicole dovrebbero essere bianche. Quindi, posizionare le pellicole su tappetini di silicone e asciugarle a 50 gradi Celsius per 48 ore per prepararle alla misurazione del peso a secco.

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Metodologie per lo studio

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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026