Visualizzazione della motilità batterica utilizzando un terreno semisolido integrato con colorante redox

Inizia con una piastra di coltura contenente un campione di ceppo batterico.

Usando un ago da inoculazione sterilizzato, scegli una colonia isolata.

In condizioni sterili, pungere-inoculare questa colonia in un mezzo semisolido integrato con un colorante redox incolore. Il mezzo semisolido limita la diffusione passiva dei batteri.

Preparare le provette di controllo, un controllo negativo con un ceppo batterico non mobile privo di flagelli e un controllo positivo con un ceppo batterico flagellato altamente mobile.

Incubare tutte le provette inoculate per favorire la crescita e la motilità batterica.

Durante l'incubazione, i batteri metabolicamente attivi riducono il colorante redox incolore a un prodotto insolubile di colore rosso.

I batteri mobili proliferano e migrano attraverso il mezzo semisolido utilizzando i loro flagelli, creando una zona rossa diffusa che si irradia verso l'esterno nel mezzo circostante.

I batteri non mobili proliferano ma non migrano; La zona rossa rimane confinata al sito di puntura.

Ciò consente la distinzione visiva dei ceppi batterici non mobili e mobili.

Prelevare singole colonie di batteri da piastre di agar e inocularle in entrambi i terreni semisolidi mediante puntura con aghi da inoculazione. Ricorda di includere i ceppi non modali come controlli negativi e i ceppi modali come controlli positivi.

Incubare le provette a 37 gradi Celsius e osservare i risultati dopo 24-48 ore di incubazione. Se solo la linea di puntura è rossa, caratterizzare i batteri come non modali.

Se il colore rosso si diffonde verso l'esterno lungo la linea di puntura, caratterizzare i batteri come modali.