Una procedura per la purificazione di una proteina marcata con poliistidina da Streptococcus mutans

0 visualizzazioni4:28 min • October 30th, 2025

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Prendiamo una coltura di Streptococcus mutans che esprime una proteina marcata con poliistidina secreta nel terreno.

Centrifugare la coltura e raccogliere il surnatante ricco di proteine.

Aggiungere solfato di ammonio e incubare agitando per precipitare le proteine riducendone la solubilità.

Trasferire la soluzione in una provetta, centrifugare ed eliminare il surnatante.

Risospendere il pellet in un tampone legante contenente sali e basso imidazolo per stabilizzare la proteina.

Dializzare la soluzione con il tampone legante fresco per rimuovere i sali in eccesso.

Centrifugare la soluzione dializzata in pellet di detriti insolubili, quindi filtrare il surnatante.

Miscelare il filtrato con resina di affinità caricata con nichel e incubare per consentire il legame selettivo della proteina marcata con poliistidina agli ioni nichel.

Caricare la miscela sulla colonna cromatografica e lavare con il tampone legante per rimuovere le proteine non legate.

Successivamente, aggiungere un tampone di eluizione con imidazolo alto per sostituire l'istidina dagli ioni nichel e rilasciare la proteina marcata con poliistidina.

Raccogli questo eluato contenente le proteine purificate.

Centrifugare la sospensione di coltura batterica per 20 minuti a 10.000 volte g a quattro gradi Celsius.

Trasferire il surnatante di coltura in un becher di vetro da tre litri. Per concentrare le proteine del surnatante di coltura, posizionare il surnatante da due litri su un agitatore magnetico e iniziare a mescolare energicamente. Aggiungere 1.122 grammi di solfato di ammonio e lasciare che il precipitato si formi mescolando vigorosamente a quattro gradi Celsius per un periodo di 4 ore o durante la notte.

Quindi, centrifugare la soluzione precipitata di solfato di ammonio a 15.000 volte g per 20 minuti a quattro gradi Celsius. Decantare il surnatante. Con una spatola, raccogliere il precipitato e trasferirlo in un becher di vetro da 200 millilitri.

Risospendere i pellet in 35 millilitri di tampone legante. Quindi, trasferire circa 25 millilitri di sospensione in un tubo per dialisi in cellulosa rigenerata. Posizionare il tubo per dialisi in 2,5 litri di tampone legante per l'agitazione su un agitatore a quattro gradi Celsius per dializzare la sospensione.

Sostituire la soluzione di dialisi dopo due ore e continuare la dialisi durante la notte. Quindi, trasferire la sospensione dialitizzata dal tubo alle provette da centrifuga e posizionare le provette nella centrifuga a 20.000 volte g per 10 minuti a quattro gradi Celsius. Con l'apparecchiatura di filtrazione ad aspirazione, versare il surnatante su un filtro a membrana da 0,2 micrometri per filtrare.

Trasferire il filtrato in un pallone da 75 millilitri.

Per frazionare il gtfSI marcato con poliistidina dalla sospensione filtrata, preparare prima una cromatografia di affinità con metalli immobilizzati. Dopo aver bilanciato la resina secondo il manoscritto, chiudere il rubinetto di Hoffman.

Aggiungere cinque millilitri della sospensione filtrata nella colonna per ottenere un impasto. Quindi, trasferire tutto l'impasto nella sospensione filtrata rimanente e far roteare delicatamente la miscela per 30 minuti a quattro gradi Celsius. Caricare nuovamente la miscela nella colonna.

Aprire il rubinetto di Hoffman per rimuovere la sospensione dal flusso di gravità. Lavare la resina IMAC con 20 millilitri di tampone legante e quindi eluire 20 millilitri di tampone di eluizione per ottenere il gtfSI ricombinante.

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Ultimo aggiornamento: 22 agosto 2026