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Prendi una coltura di Lactococcus lactis che esprime la peptidasi legata alla membrana NisP.
Mescola la coltura con un terreno ricco di sostanze nutritive.
Aggiungere l'agar fuso, mescolare e versare in un piatto per distribuire uniformemente il L. lactis nell'agar.
Una volta solidificato, perforare i pozzetti nell'agar.
Successivamente, prendiamo E. coli ricombinante che produce varianti precursori wild-type o modificate del peptide antimicrobico nisina.
Centrifugare per pellettare i batteri, scartare i surnatanti e risospendere i pellet nel tampone.
Sonicare per lisare i batteri, centrifugare e trasferire i surnatanti in provette fresche.
Normalizzare i lisati alla stessa densità ottica utilizzando il tampone per garantire livelli costanti di peptidi.
Pipettare ogni campione in singoli pozzetti di agar e incubare i campioni.
Durante l'incubazione, i peptidi precursori della Nisina si diffondono nell'agar e vengono scissi da NisP, generando nisina matura.
La nisina matura inibisce la crescita di L. lactis , formando aloni chiari intorno al pozzo.
Confronta le dimensioni dell'alone per valutare l'attività antimicrobica delle varianti di nisina.
Aggiungere un millilitro di Lactococcus lactis pre-coltura a 25 millilitri di brodo 2X M17 contenente 10 microgrammi per millilitro di cloramfenicolo e due percento di glucosio. Quindi, aggiungi 25 millilitri di agar fuso tiepido, mescola e versa la soluzione in una grande capsula di Petri. Mantenendo le condizioni sterili, asciugare la piastra per 10-15 minuti.
Quindi, sterilizzare le estremità di una pipetta di vetro Pasteur alla fiamma. Dopo che la pipetta si è raffreddata, utilizzare la sua estremità larga per creare dei fori nell'agar solidificato. Etichettare il fondo della capsula di Petri per ogni campione accanto alla posizione del foro corrispondente.
Per il test di attività, prelevare i campioni da un millilitro delle colture di produzione di E.coli e centrifugarli per tre minuti a 7.000 volte g. Aspirare il terreno rimanente e risospendere il pellet cellulare in 500 microlitri di tampone fosfato di sodio mediante pipettaggio.
Quindi, sonicare il campione sul ghiaccio immergendo la punta della sonda del sonicatore nella sospensione cellulare. Inizia la sonicazione. Quindi, centrifugare il lisato cellulare per 10 minuti a 13.000 volte g in detriti di celle a pellet.
Trasferire il surnatante in una nuova provetta di reazione su ghiaccio. Diluire e normalizzare i surnatanti fino a un millilitro di OD600 pari a 0,6, rispetto alla densità cellulare raccolta, con tampone fosfato di sodio e mescolare. Per testare l'attività antimicrobica, aggiungere 40 microlitri del campione normalizzato nell'apposito foro dell'agar indicatore.
Attendere che tutto il campione si diffonda nell'agar. Incubare la piastra per una notte a 30 gradi Celsius. Il giorno successivo, scatta foto della piastra di agar utilizzando uno scanner a letto piano o una fotocamera digitale.
La dimensione dell'alone di inibizione della crescita può essere misurata a mano o utilizzando un software.