$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Iniziare con vermi adulti di C. elegans appena uccisi con cuticole permeabilizzate, sterili e appena uccisi, sospesi in tampone.
Questi vermi sono infettati da batteri nei loro tratti intestinali.
Prendere una piastra a pozzetti profondi contenente particelle abrasive in un tampone e trasferire un singolo verme in ogni pozzetto.
Coprire il piatto con pellicola sigillante e un coperchio.
Incubare la piastra a bassa temperatura per evitare il surriscaldamento durante la rottura dei tessuti.
Premere il coperchio per sigillare i pozzetti.
Utilizzando un disgregatore di tessuti, agitare meccanicamente la piastra. Le particelle abrasive distruggono i tessuti dei vermi, rilasciando batteri intestinali.
Picchiettare la piastra e centrifugarla per pellettare il contenuto.
Mescolare il contenuto per distribuire uniformemente i batteri, quindi trasferirli in pozzetti freschi.
Diluire in serie la sospensione batterica in tampone.
Piastra le diluizioni su piastre di agar e incuba per consentire la formazione di colonie.
Contare le colonie per quantificare la variazione della carica batterica intestinale tra i singoli vermi.
Per prepararsi alla disgregazione meccanica dei vermi, procurarsi una piastra sterile a 96 pozzetti profonda due millilitri e un coperchio per piastra in silicone.
Utilizzare una spatola a paletta sterile per aggiungere una piccola quantità di carburo di silicio sterile a griglia 36 a ciascun pozzetto in modo che la griglia copra a malapena il fondo del pozzetto. Aggiungere 180 microlitri di tampone per vermi M9 a ciascun pozzetto. Etichettare le colonne e le righe, quindi coprire la piastra senza stringere con il coperchio della piastra in silicone.
Quindi, trasferire i vermi permeabilizzati in una piccola capsula di Petri con M9TX-01 riempita fino a una profondità di un centimetro. Utilizzando un microscopio da dissezione, pipettare i singoli vermi in volumi da 20 microlitri e trasferirli nei singoli pozzetti della piastra a 96 pozzetti. Per espellere eventuali vermi attaccati alla pipetta, aspirare 20 microlitri di M9TX-01 da un'area libera della capsula di Petri e rilasciarlo nuovamente nella piastra. Una volta trasferite tutte le viti senza fine, coprire la piastra a 96 pozzetti con un foglio di pellicola sigillante flessibile con il lato del retro in carta rivolto verso il basso sui pozzetti del campione.
Posizionare leggermente il tappetino sigillante in silicone sopra la pellicola sigillante flessibile senza premere il coperchio nei pozzetti. Posizionare la piastra a quattro gradi Celsius per 30-60 minuti per evitare il surriscaldamento durante l'interruzione. Dopo aver raffreddato la piastra, premere saldamente il tappetino sigillante in silicone nei pozzetti per sigillarli.
Quindi fissare le piastre nel disgregatore tissutale. Agitare le piastre per un minuto a 30 hertz. Quindi ruotare le piastre di 180 gradi e ripetere l'agitazione per un minuto.
Picchiettare saldamente le piastre sul banco due o tre volte per rimuovere la sabbia dalla pellicola sigillante flessibile. Centrifugare le piastre a 2.400 volte g per due minuti per raccogliere i campioni sul fondo dei pozzetti. Quindi rimuovere il coperchio in silicone e rimuovere la pellicola sigillante.
Per preparare una diluizione seriale decuplicata dei vermi digestati, riempire 180 microlitri di un X PBS nelle file da B a D di una piastra a 96 pozzetti. Utilizzando un pipettatore a pozzetti multipli impostato su 200 microlitri, mescolare lentamente il vermiero digestato mediante pipettaggio. Trasferire la quantità massima di liquido nella riga A della piastra a 96 pozzetti contenente PBS.
Utilizzando una pipetta multicanale, rimuovere 20 microlitri dalla fila superiore ed erogare nella fila B, quindi miscelare. Ripetere questo passaggio per la riga B fino a C e poi per la riga C fino a D per ottenere una diluizione di 1000 volte. Per la quantificazione batterica di vermi monocolonizzati, piastrate da 10 a 20 microlitri di ciascuna diluizione su piastre solide di agar. Per la colonizzazione multispecie, piastrate 100 microlitri di ogni diluizione su piastre di agar da 10 centimetri.