Trasformazione naturale ed espressione della GFP nel cianobatterio filamentoso Phormidium lacuna

0 visualizzazioni4:37 min • October 30th, 2025

Prendete una coltura di Phormidium lacuna, un cianobatterio filamentoso.

Omogeneizzare la coltura per disperdere i filamenti, quindi centrifugare per pellettare i batteri.

Scartare il surnatante e risospendere il pellet in un terreno ricco di sostanze nutritive.

Aggiungere il DNA plasmidico contenente la proteina fluorescente verde e i geni di resistenza agli antibiotici su una piastra di agar integrata con antibiotici.

Aggiungere la sospensione batterica sul DNA e incubare in condizioni di luce.

I batteri internalizzano il DNA utilizzando pili di tipo IV. I geni introdotti si integrano in una delle molteplici copie del genoma batterico.

Ridistribuire i batteri su una piastra di agar integrata con antibiotici per selezionare i batteri trasformati.

Al microscopio ottico, identifica i filamenti verdi sani che indicano una trasformazione riuscita.

Trasferire i filamenti selezionati in terreni liquidi con una maggiore concentrazione di antibiotici per arricchire la popolazione trasformata.

Ancora una volta, piastrinarli su agar con livelli di antibiotici più elevati per segregare i trasformanti.

Visualizzare l'espressione della GFP al microscopio a fluorescenza per confermare il successo della trasformazione.

Inizia inoculando 50 millilitri di terreno F2 liquido in ciascuna delle due fiasche da 250 millilitri con un millilitro di filamenti di P. lacuna provenienti da una coltura in corso. Coltivare alla luce bianca sotto agitazione per circa cinque giorni a 25 gradi Celsius.

Dopo cinque giorni, omogeneizzare 100 millilitri di sospensione cellulare di P. lacuna a 10.000 giri/min per tre minuti e misurare la densità ottica a 750 nanometri. Quindi, centrifugare la sospensione cellulare per 15 minuti a 6.000 volte g. Rimuovere il surnatante e sospendere il pellet in 800 microlitri del liquido rimanente e ulteriore terreno F2+. Prelevare otto piastre di agar F2+ Bacto contenenti 120 microgrammi per millilitro di kanamicina e pipettare 10 microgrammi di DNA al centro di ciascuna piastra di agar.

Pipettare immediatamente 100 microlitri di sospensione cellulare sopra il DNA. Conservare la piastra di agar senza coperchio sul banco pulito per consentire l'evaporazione del liquido in eccesso. Chiudete il piatto e coltivatelo alla luce bianca a 25 gradi Celsius per due giorni.

Dopo due giorni, distribuire i filamenti di ciascuna piastra di agar su diverse piastre di agar F2+ Bacto fresche contenenti 120 microgrammi per millilitro di kanamicina con un anello di inoculazione. Coltivate le piastre in luce bianca a 25 gradi Celsius e controllate regolarmente le colture al microscopio. Dopo 14-28 giorni, identificare i filamenti brunastri morti e cercare i filamenti trasformati al microscopio.

I filamenti trasformati hanno un aspetto sano e verde e sono diversi dalla maggior parte dei filamenti. Trasferire ogni singolo filamento trasformato in fiasche da 50 millilitri con 10 millilitri di terreno F2+ con 250 microgrammi per millilitro di kanamicina. Coltiva alla luce bianca a 25 gradi Celsius su uno shaker e osserva la crescita per un massimo di quattro settimane.

Trasferisci i filamenti nel terreno di agar contenente 250 microgrammi per millilitro di kanamicina e attendi che i filamenti crescano. Quindi, aumentare nuovamente la concentrazione di kanamicina per accelerare la segregazione. Per l'espressione della GFP, osserva singoli filamenti con un microscopio a fluorescenza con un ingrandimento di 40X o 63X e cattura un'immagine di trasmissione in campo chiaro e un'immagine a fluorescenza.

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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026