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Si inizia con una cuvetta raffreddata contenente una sospensione di cellule batteriche elettrocompetenti, che hanno una maggiore suscettibilità alla permeabilizzazione della membrana.
La sospensione contiene anche biomolecole marcate con fluorofori organici.
Applicare un impulso elettrico ad alta tensione per creare pori temporanei di membrana, permettendo l'ingresso della biomolecola nel citoplasma.
Aggiungi un mezzo ricco di nutrienti e trasferisci le cellule in un tubo. Incubare per favorire la riparazione della membrana.
Centrifugare le cellule, poi scartare il sovrantantante contenente biomolecole non internalizzate.
Risospendere le cellule in un tampone ad alto contenuto di sale contenente un detergente per staccare le biomolecole aderite alla superficie.
Centrifuga di nuovo, scarta il surnatant e risospensa le celle nel buffer.
Trasferire la sospensione su un filtro e una centrifuga per eliminare il flusso attraverso che contiene eventuali biomolecole non internalizzate. Poi, risciacqua le cellule con un tampone nuovo e risospendile.
Monta le celle su un cuscinetto di agarosio e posiziona una copertura. I batteri marcati con fluorescenze sono pronti per la visualizzazione.
Partendo da una scorta di biomolecole fluorescenti preparate in un tampone a bassa forza ionica, trasferisci fino a cinque microlitri delle biomolecole in un'aliquota di 20 microlitri di batteri competenti o in 50 microlitri di cellule di lievito competenti. La quantità di biomolecole fluorescenti incubate con le cellule è direttamente correlata con la quantità di biomolecole internalizzate per cellula dopo l'elettroporazione.
Incubare il composto sul ghiaccio per un massimo di 10 minuti. Contemporaneamente, scegli una cuvetta di elettroporazione con la giusta distanza tra gli elettrodi e lascia raffreddare sul ghiaccio. Trasferisci la miscela cellulare nella cuvetta pre-raffreddata.
Tocca delicatamente la cuvetta alcune volte per rimuovere eventuali bolle dalla soluzione. Rimuovi qualsiasi umidità dalla cuvetta con un tovagliolo di carta e metti la cuvetta nell'elettroporatore. Applica un impulso di alta tensione alle celle.
Subito dopo questo processo, verifica che la costante di tempo visualizzata sull'elettroporatore sia tra quattro e sei millisecondi. Le costanti temporali più basse sono spesso dovute alla presenza di sale o bolle in eccesso all'interno della cuvetta, e questo può diminuire o inibire completamente l'assorbimento delle biomolecole nelle cellule. Impulsi di tensione più elevati migliorano il carico della cellula, ma possono anche influire sulla vitalità della cellula.
Immediatamente dopo l'elettroporazione, aggiungi 500 microlitri di substrato ricco e trasferisci le celle in un tubo fresco da 1,5 millilitri. Lasciare che la membrana cellulare si riprenda incubando i batteri a 37 gradi Celsius o il lievito a 29 gradi Celsius per 2-10 minuti. Dopo l'incorporazione della biomolecola e il recupero della crescita, si fanno girare le cellule per un minuto in una centrifuga pre-raffreddata a quattro gradi Celsius e si scarta il soprantantante.
Sospendere il pellet in 500 microlitri di buffer e ripetere i processi di spin down, rimozione del sovrantantante e risospensione del buffer altre tre volte. Questi passaggi di lavaggio rimuoveranno tutte le tracce di biomolecole non internalizzate dalla sospensione cellulare.
Nel caso dell'internizzazione delle proteine marcate, un ulteriore passaggio di purificazione viene eseguito pipettando la sospensione cellulare in un tubo da 1,5 millilitri dotato di un filtro a membrana da 0,22 micron sopra. Separare le celle dal buffer tramite centrifugazione, assicurandosi che rimanga abbastanza liquido sopra il filtro per evitare che le celle si secchino e elimini la frazione di flusso diretto. Sotto il filtro, aggiungi 500 microlitri di PBS fresco sulle celle e ripeti la combinazione di una centrifuga seguita da un'aggiunta di PBS fresco altre due volte.
Esegui una centrifuga finale a 3.300 g per un minuto per rimuovere il precedente lavaggio PBS. Risospendere le celle con 150 microlitri di PBS.
Infine, rimuovi il copricapo superiore dal cuscinetto di agarosio già realizzato. Carica le celle sul pad pipettando 10 microlitri della sospensione della cella a discesa. Dopo aver posizionato un nuovo sottile di copertura pulito sopra il tampone di agarosio, le celle in sandwich sono ora pronte per la microscopia fluorescente.