$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Si inizia con un pesce zebra adulto infettato da un ceppo resistente agli antibiotici di Vibrio cholerae. Questo batterio patogeno esprime l'enzima β-galactosidasasi e colonizza il tratto intestinale.
Raccogli il pesce e trasferiscilo in una soluzione contenente un'overdose di anestetico per sopportarlo.
Posiziona il pesce con il lato ventrale verso l'alto e fissalo con dei perni.
Disinfettare l'addome, eseguire un'incisione longitudinale cutanea e due incisioni laterali verso la testa, quindi fissare la pelle per esporre il tratto intestinale.
Trasferire il tratto in un tubo di omogeneizzazione contenente un tampone freddo con perle di vetro.
Incubare con agitazione, permettendo alle perline di vetro di disturbare il tessuto e liberare i batteri.
Diluire serialmente l'omogeneato, placcarlo sul mezzo e incubare. Il mezzo contiene un substrato cromogenico di β-galactosidasasi e un antibiotico per eliminare i contaminanti.
I batteri esprimono l'enzima β-galactosidasi, che idrolizza il substrato cromogenico portando alla formazione di colonie pigmentate di blu.
Conta le colonie per stimare la carica batterica intestinale.
Quando l'esperimento raggiunge il suo obiettivo desiderato, si prélève un campione da 15 millilitri dell'acqua infettiva a scopo diagnostico. Poi raccogli i pesci e smalti correttamente l'acqua infetta. Orienta il lato ventrale verso l'alto e fissa il corpo con un perno attraverso la mascella inferiore e un altro spillo appena dietro l'ano.
Inclina entrambi i perni lontano dal corpo. Successivamente, pulisci la superficie ventrale del pesce con il 70% di etanolo. Poi, sterilizza un bisturi e forbici Vannas usando etanolo al 70% e una fiamma.
Ora, usando il bisturi, fai una piccola incisione longitudinale nella pancia che penetra le scaglie, ma taglia solo fino alla pelle. Poi, con le forbici, estendi l'incisione con cura lungo tutta la lunghezza del corpo, tagliando non più a fondo del livello della pelle. Evita di tagliare l'ano.
Poi fai due tagli laterali verso la testa per espandere l'apertura. Poi, fissa la pelle su ciascun lato delle incisioni laterali alla superficie di sezione, inclinando i perni verso l'esterno, lontano dal corpo. Il tratto intestinale dovrebbe ora essere visibile come un tubo molto sottile e pallido.
Ora, usa due paia di pinze sterilizzate con la fiamma per rimuovere con cura l'intero tratto intestinale, che può essere piuttosto fragile. Trasferire il tessuto in un tubo di omogeneizzazione contenente perline di vetro e un millilitro di tampone freddo. Successivamente, omogeneizzare i tessuti come descritto nel protocollo testuale e quantificare i livelli di colonizzazione intestinale.
Successivamente, effettuare diluizioni seriali dell'omogeneato intestinale e del tamponamento. Per ogni pesce, prepara cinque o sei diluizioni di dieci volte in volumi da un millilitro. Vortice i tubi per il mixaggio.
Poi, si tavolano da 100 a 200 microlitri di ciascuna diluizione su piastre agar LB contenenti streptomicina e X-gal. Incubare le piastre a 30 gradi Celsius per 16-18 ore. Dopo l'incubazione notturna, contare le colonie di V. cholerae sulle lastre.
Questi batteri tipicamente producono colonie azzurro pallido su terreno LB con X-gal.