Generazione di sferoplasti da batteri gram-negativi

0 visualizzazioni4:02 min • February 26th, 2026

Prendiamo un substrato contenente un antibiotico bloccante la divisione cellulare.

Inoculalo con batteri Gram-negativi a forma di bastoncello.

Incuba con lo scuotito.

In presenza dell'antibiotico, i batteri continuano a crescere senza dividersi e formano lunghi filamenti.

Raccogli la coltura e centrifugala a bassa temperatura. Scartare il soprantantante e lavare i filamenti con una soluzione di saccarosio per prevenire la lisi.

Scartate la soluzione di saccarosio.

Aggiungi un tampone seguito da enzimi ed EDTA. L'EDTA indebolisce la membrana esterna, permettendo al lisozima di entrare e degradare lo strato di peptidoglicano.

Questo rimuove la parete cellulare, permettendo alla cellula batterica di restringersi. La DNasi I rompe il DNA cromosomico rilasciato dalle cellule e previene l'aggregazione cellulare.

Aggiungi una soluzione ipotonica con un leggero vortico, permettendo alla cellula di assorbire acqua.

Le membrane flessibili permettono alla cellula di assumere una forma sferica chiamata sferoplasto.

Trasferire un'aliquota contenente gli sferoplasti in due tubi con una soluzione isotonica raffreddata per stabilizzare gli sferoplasti.

Per preparare gli sferoplasti Gram-negativi di E. coli, diluire la coltura notturna in un rapporto 1 a 100 in 25 millilitri di TSB in una fiaschetta da 250 millilitri e riportare i batteri nell'incubatrice di scuotimento per altre 2,5 ore. Quando la soluzione raggiunge una densità ottica da 0,5 a 0,8 a 600 nanometri, si diluisce la coltura con un rapporto uno a dieci in TSB fresco in una nuova fiaschetta da 250 millilitri per una seconda incubazione di 2,5 ore con una concentrazione efficace finale di 60 microgrammi per millilitro di cefalessina.

Produrre filamenti a singola cellula di circa 50-150 micrometri di lunghezza, come visualizzati al microscopio lucico con un ingrandimento di 1000x. Centrifuga la soluzione batterica per raccogliere i filamenti e decantare il surnadante. Lava i filamenti con l'aggiunta delicata di un millilitro di saccarosio a 0,8 molari, facendo attenzione a non disturbare il pellet.

Dopo un minuto, elimina il surnatante senza disturbare il pellet e aggiungi i reagenti indicati nel rispettivo ordine ai filamenti. Dopo dieci minuti a temperatura ambiente, aggiungi gradualmente un millilitro di soluzione A per un periodo di un minuto, mentre si fa ruotare delicatamente la soluzione a mano. Incubare la soluzione per quattro minuti a temperatura ambiente, poi dividere la sospensione filamentosa in due aliquote uguali tra due tubi conici da 15 millilitri contenenti sette millilitri di soluzione B a quattro gradi Celsius. Successivamente, si bloccano i filamenti tramite centrifugazione e si utilizza una pipetta sierologica per rimuovere con cura tutto tranne uno o due millilitri del surnatante senza disturbare i pellet.

Usa una micropipetta p1000 per sospendere delicatamente i pellet. Controlla una piccola aliquota del campione per la formazione di sferoplasti tramite microscopia chimica. Lo sferoplasto può quindi essere conservato a meno 20 gradi Celsius per un massimo di una settimana o fino a quando non hanno attraversato tre cicli di congelamento e discongelamento.

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Ultimo aggiornamento: 22 agosto 2026