Quantificazione della soppressione del biofilm indotta da enzimi nei batteri patogeni

0 visualizzazioni3:38 min • February 26th, 2026

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Prendere una micropiastra contenente pozzi di controllo e trattamento, ciascuno inoculato con un batterio patogeno biofilmato.

I pozzi di trattamento contengono un enzima che interrompe la formazione di biofilm.

Incubare in condizioni micro-anaerobiche per creare un ambiente a basso contenuto di ossigeno. Questo favorisce la secrezione di molecole di segnalazione batterica che mediano l'adesione superficiale. Nei pozzi di trattamento, l'enzima degrada queste molecole, riducendo così l'attacco batterico.

Lava i pozzi per rimuovere le cellule non aderenti.

Introduci un substrato fresco e incuba. I batteri aderiti proliferano e secernono sostanze polimeriche extracellulari, che formano la matrice di biofilm.

Rimuovi il substrato e lava i pozzi.

Aggiungere un colorante cationico e incubare per permettere il legame ai componenti del biofilm caricati negativamente.

Lava per rimuovere il colorante non legato.

Incubare con un solvente in agitazione per liberare il colorante legato nella soluzione.

Misurare la densità ottica o OD per quantificare la biomassa del biofilm.

Una riduzione del diametro oculare nei pozzi di trattamento riflette una riduzione della formazione di biofilm, risultante da una compromessa adesione cellulare iniziale.

Per cominciare, coltiva una coltura da 5 millilitri di A. baumannii S1 in LB a 30 gradi Celsius in un incubatore a scuotimento per 16 ore.

Regola la coltura a un OD600 di 0,8. Poi usa LB fresco contenente 4 milligrammi per millilitro di enzima GKL purificato per diluire la coltura da 1 a 100. E aggiungiamo 100 microlitri ai pozzi di una piastra da 96 pozzi.

Usa i coperchi per coprire i piatti e mettili in un contenitore di plastica da 10 litri. Sigilla il contenitore e lascia incubare a 30 gradi Celsius per tre ore prima di rimuovere delicatamente il substrato. Aggiungi altri 100 microlitri di mezzo LB fresco ai pozzi e incuba la piastra a 30 gradi Celsius per 21 ore.

Dopo aver rimosso delicatamente il substrato, usa 200 microlitri di acqua sterile per lavare delicatamente le cellule batteriche planctoniche. Posizionare la punta della pipetta sul fondo del pozzo e rimuovere con cura il mezzo liquido per garantire minime perturbazioni sul biofilm estraneo tra aria e liquido. Poi aggiungi 100 microlitri di soluzione di viola cristallina all'1% in ciascun pozzo e incuba per 15 minuti a temperatura ambiente.

Rimuovere la soluzione di viola cristallina utilizzando 200 microlitri di acqua sterile per lavare i pozzi tre volte. Aggiungi 100 microlitri di acido acetico al 33% in ogni pozzo e incuba con una lieve agitazione per 15 minuti per sciogliere il colorante. Quantificare la quantità di biofilm misurando l'assorbenza del viola cristallino a 600 nanometri. La quantità di viola cristallina è proporzionale alla quantità di biofilm formato.

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Ultimo aggiornamento: 22 agosto 2026