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Prendi un topo trattenuto e pulisci la sua coda con alcol per ridurre la contaminazione nel sito di iniezione e dilatare la vena.
Iniettare Listeria monocytogenes, un batterio patogeno, nella vena caudale per portarlo direttamente nel flusso sanguigno.
Applica una pressione delicata sul punto di iniezione per fermare il sanguinamento, poi lascia che il topo si riprenda.
I batteri iniettati circolano sistemicamente e raggiungono il cuore. Poi colonizzano il cuore, stabilendo un'infezione.
Successivamente, preleva il cuore infetto dal patogeno dal topo soppresso.
Omogeneizzare il cuore usando un omogeneizzatore per liberare batteri dal tessuto.
Eseguire diluizioni seriali dell'omogeneato in una piastra multi-pozzetto.
Posiziona piccoli volumi di ogni diluizione su una piastra di agar e lasciali asciugare.
Incubare la piastra per permettere ai batteri di proliferare e formare colonie visibili.
Contare le colonie per determinare il carico batterico nel cuore del topo contaminato.
Per vaccinare L. monocytogeni nei topi, mettono un animale in un'imbracatura per immobilizzarlo durante l'iniezione. Usa un assorbente alcolico per pulire il sito dell'iniezione e dilata la vena caudale.
Poi, con una siringa da 1 millilitro e un ago calibro 27,5, iniettare delicatamente la vena caudale del topo con 200 microlitri della coltura desiderata. Usa un asciugamano di carta per fermare eventuali emorragie che potrebbero verificarsi dall'iniezione prima di rimettere l'animale in una gabbia nuova. Dopo aver sacrificato gli animali fino a 72 ore dopo, secondo il protocollo testo sotto l'armadietto di biosicurezza, fissare l'animale su un blocco di dissezione e usare etanolo al 70% per saturarlo.
Fai un'incisione a forma di Y sull'addome e sul torace che si estende dall'apertura vaginale fino al processo xifoide, proseguendo fino all'ascella di ciascun braccio. Tira indietro la pelle, rimuovi gli aghi dalle gambe e usali per tenere aperta la dissezione e tagliare delicatamente il peritoneo, esponendo intestini, stomaco, fegato e milza.
Ora, localizza il diaframma e taglia delicatamente lungo la gabbia toracica per visualizzare il torace. Taglia attraverso il processo xifoide e lo sterno fino al collo per aprire il torace, esponendo cuore e polmoni. Usando la pinza, afferra delicatamente il cuore per l'apice e sollevalo per creare tensione nell'aorta e nei vasi polmonari. Poi taglia i vasi per liberare il cuore e mettilo in un tubo separato d'acqua.
Dopo aver preparato un omogeneizzatore secondo il protocollo testuale, omogeneizzare un fegato per almeno due minuti o finché non rimangono porzioni visibili dell'organo. Usa una pinzetta per rimuovere eventuali detriti grossi dalla sonda.
Una volta omogeneizzati tutti i campioni di organi, preparare diluizioni seriali da 1 a 10 a 10.000 per i campioni di fegato e milza, e da 1 a 10 a 1 a 1000 per il cuore. Placca le diluizioni su piastre di agar LB preriscaldate. I campioni non diluiti possono essere placcati su lastre separate per garantire che gli organi siano stati adeguatamente infetti.
Dopo che i piatti si sono asciugati, metti i piatti nell'incubatrice a 37 gradi Celsius. Usa parafilm per avvolgere le piastre da 96 pozzi di campioni diluiti e metterle in un congelatore a meno 80 gradi Celsius.
Il giorno seguente, contare il numero di colonie e utilizzare le diluizioni per calcolare il numero totale di batteri per organo.