Modellazione dell'infezione intestinale nelle larve di pesce zebra utilizzando batteri alimentari

0 visualizzazioni2:56 min • February 26th, 2026

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Si inizia con una piastra multipozzo contenente paramecia pre-infetta con proteine fluorescenti patogeniche che esprimono E. coli.

Aggiungi larve di pesci zebra anestetizzate e co-incubale in condizioni di luce diurna per imitare l'ambiente naturale di alimentazione.

Durante l'incubazione, le larve riacquistano conoscenza e predano paramecia infetta.

Una volta ingerite, le paramecia vengono digerite, rilasciando E. coli nel tratto intestinale.

La colonizzazione batterica progrede dall'intestino anteriore a quello posteriore, imitando un'infezione trasmessa dagli alimenti.

Successivamente, lavare le larve in un mezzo integrato con un agente anestetico per ri-anestetizzarle.

Successivamente, si collocano le larve in un agasio a basso punto di fusione all'interno di una piastra di imaging fluorescente.

Utilizzando uno stereomicroscopio, allineare il pesce zebra e incubare per permettere all'agarosio di solidificarsi.

Sovrapporsi con un mezzo ricco di nutrienti integrato con un agente anestetico.

Utilizzando un microscopio a fluorescenza, osserva le larve per la distribuzione di E. coli fluorescenti e valutare la progressione dell'infezione batterica

Per l'infezione alimentare del pesce zebra, si diluiscono i campioni di paramecia a due volte dieci fino a cinque paramecia per millilitro di concentrazione media di E3 e si aggiungono 3 millilitri di ciascuna coltura di paramecia in un pozzo di una piastra a 6 pozzi per ogni condizione.

Successivamente, trasferire 10 pesci zebra anestetizzati in ciascun pozzo in un volume minimo di liquido e incubare le co-colture per due ore a 30 gradi Celsius in un incubatore diurno in condizioni di luce diurna.

Al termine dell'incubazione, lavare il pesce zebra in 5 pozzi diversi contenenti 3 millilitri di mezzo E3 fresco integrato con 100 milligrammi per litro di tricaina per pozzo e immergere ogni pesce zebra in 3 millilitri di agarosio a basso scioglimento all'1% in una piastra a 6 pozzi a parete nere.

Quando tutti i pesci sono stati inseriti, posiziona la piastra sotto un microscopio stereoscopico e usa una punta di carico gel tagliata per assicurarti che le teste siano a sinistra e le code a destra in ogni campo di osservazione.

Aspettare 5 minuti che l'agarosio si assedi, poi sovrapporre il pesce incorporato con mezzo E3 fresco integrato con tricaina, e fotografare il pesce zebra con un microscopio fluorescente per valutare il progresso delle infezioni batteriche.

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Ultimo aggiornamento: 22 agosto 2026