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Iniziare con un monostrato di cellule epiteliali in un terreno di coltura adatto. Queste cellule esprimono integrine, recettori di superficie che attraversano la membrana. Il terreno di coltura contiene fibronectina secreta da cellule epiteliali, una glicoproteina.
Aggiungere una sospensione di Staphylococcus aureus, un batterio patogeno gram-positivo, alla piastra di coltura. Questi batteri contengono proteine leganti la fibronectina, o FnBP, ancorate nella loro parete cellulare.
Incubare la piastra per avviare l'infezione batterica, in cui la fibronectina si lega all'FnBP dei batteri e alle integrine sulle cellule ospiti epiteliali. Questa interazione tripartita FnBP-fibronectina-integrina media l'internalizzazione batterica nell'ospite.
Trattare le cellule con lisostafina, un enzima endopeptidasi, e incubare. La lisostafina entra selettivamente nelle pareti cellulari dei batteri extracellulari. Sfalda i ponti della pentaglicina nei peptidoglicani, lisicandoli così mentre i batteri intracellulari rimangono protetti dalla lisostafina.
Integrare la coltura con un enzima proteolitico per disattivare la lisostafina rimanente, impedendole di uccidere i batteri intracellulari nei passaggi.
Aggiungere un tampone di lisi alla coltura, che rompe le cellule epiteliali dell'ospite e rilascia i batteri intracellulari nel lisato cellulare. Successivamente, piastrate il lisato cellulare contenente batteri su una piastra di coltura adatta e incubate.
I batteri crescono e si moltiplicano per formare colonie batteriche, che possono essere analizzate per stimare l'entità dell'internalizzazione batterica nelle cellule ospiti.
Prima dell'inoculazione cellulare, osservare ogni pozzetto della piastra a 24 pozzetti mediante microscopia a basso ingrandimento per assicurarsi che le cellule siano sane e crescano come previsto. Quindi, rimuovere ed eliminare il terreno di coltura cellulare esaurito dalla piastra a 24 pozzetti e aggiungere 500 microlitri di sospensione batterica a ciascun pozzetto contenente il 100% di cellule confluenti. Incubare le cellule per 2 ore a 36 gradi Celsius e 5% di anidride carbonica.
Per quantificare i batteri intracellulari con il test di protezione enzimatica migliorato, preparare il tampone di lisi 4X, il Triton X-100 al 2%, la tripsina-EDTA e la lisostafina e le soluzioni di lavoro come indicato nel manoscritto del testo.
Successivamente, preparare 6,25 millilitri di terreno di infezione completo integrato con lisostafina, aggiungendo 6 millilitri di terreno di infezione completo a 250 microlitri della soluzione di lavoro di lisostafrina. Quindi, aggiungere 250 microlitri del terreno di infezione completo integrato con lisostafina in ciascun pozzetto e agitare delicatamente la piastra ruotandola a mano.
Per consentire alla lisostafina di uccidere i batteri extracellulari, incubare le cellule per 1 ora a 36 gradi Celsius e 5% di anidride carbonica. Quindi, inattivare la lisostafina aggiungendo 10 microlitri di proteinasi K a 20 microgrammi per millilitro in ciascun pozzetto e incubando le cellule per 2 minuti a temperatura ambiente.
Successivamente, aggiungere 250 microlitri di tampone di lisi 4X per lisare le cellule mediante shock osmotico e incubare le cellule per 10 minuti a 36 gradi Celsius. Dopo l'incubazione, pipettare più volte il lisato cellulare su e giù, per assicurarsi che le cellule siano completamente lisate e omogeneizzate.
Quindi, utilizzare un piatto a spirale automatico per determinare il carico di Staphylococcus aureus di ciascun pozzetto e incubare le piastre di agar per 18-24 ore a 36 gradi Celsius. Il giorno successivo, contare il numero di colonie con un contatore di colonie per calcolare il carico intracellulare di Staphylococcus aureus di ciascun pozzetto.