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Le septine sono proteine del citoscheletro che comprendono un dominio di legame GTP affiancato da domini amminici e carbossilici terminali, con una capacità intrinseca di auto-assemblarsi in filamenti e strutture di ordine superiore nella membrana plasmatica interna per diverse funzioni cellulari.
Per studiare le interazioni septina-membrana in vitro utilizzando un imitatore biologico della membrana, ottenere una provetta da microcentrifuga tagliata. Applicare l'adesivo ultravioletto sul bordo piatto non tagliato e posizionarlo su un vetrino coprioggetti in vetro idrofilizzato trattato al plasma. Dopo l'esposizione alla luce ultravioletta, l'adesivo polimerizza, creando una camera di reazione aperta.
Trasferire nella camera vescicole lipidiche unilamellari zwitterioniche monodisperse della composizione lipidica desiderata, integrate con tampone contenente cationi mono- e bivalenti. I cationi facilitano l'assorbimento e l'accumulo delle vescicole lipidiche sul vetrino. Agitare delicatamente la camera, avviando la rottura delle vescicole, e incubare.
Le vescicole rotte si dispiegano e si fondono con il vetrino coprioggetti attraverso i loro gruppi di testa idrofili, formando chiazze planari a doppio strato lipidico. I bordi dei cerotti innescano la rottura delle vescicole rimanenti, generando un doppio strato lipidico continuo supportato da planari, SLB. Rimuovere le vescicole non adsorbite in eccesso con un tampone adatto.
Successivamente, aggiungere una sospensione di septina marcata in modo fluorescente con tampone contenente agente di affollamento e incubare. Gli agenti di affollamento consentono alle septine di depositarsi sul vetrino coprioggetti rivestito in SLB. In condizioni ottimali, le septine possono associarsi con i lipidi nel SLB, assemblandosi in strutture organizzate.
Illuminare selettivamente il vetrino coprioggetto utilizzando la microscopia a fluorescenza a riflessione interna totale per eccitare le septine marcate in fluorescenza aderenti sull'SLB per osservare l'assemblaggio della septina.
Per iniziare la pulizia al plasma dei vetrini, spurgare il pulitore al plasma per 5 minuti con ossigeno per rimuovere l'aria dalle linee e dalla camera. Disporre i vetrini di copertura asciutti in una culla in ceramica. Durante lo spurgo, versare un gas inerte sui vetrini di copertura per rimuovere polvere e particolato.
Posizionare la base sul retro della camera al plasma in modo che i vetrini coprioggetti siano paralleli al bordo lungo della camera. Far funzionare il pulitore al plasma per 15 minuti con ossigeno alla massima potenza.
Per la preparazione della camera, tagliare il tappo appena sotto la parte smerigliata di una provetta PCR da 0,2 millilitri. Dipingi il bordo della provetta PCR con adesivo attivato dai raggi UV, evitando l'interno della provetta. Posizionare delicatamente la provetta per PCR incollata al centro di un vetrino coprioggetti pulito al plasma, quindi posizionare la camera sotto la luce UV a lunghezza d'onda lunga per 5-7 minuti per polimerizzare l'adesivo.
Per formare un doppio strato, aggiungere i reagenti al pozzetto. Agitare delicatamente le camere da un lato all'altro per interrompere i SUV, quindi incubare a 37 gradi Celsius per 20 minuti.
Dopo l'incubazione, sciacquare il doppio strato 6 volte con 150 microlitri di SLBB, pipettando per lavare via i lipidi in eccesso. Quindi, lavare il doppio strato 6 volte con 150 microlitri di tampone di reazione, prima di incubare con le septine.
Nell'ultima fase di lavaggio, rimuovere il tampone di reazione, lasciando 75 microlitri nel pozzetto. Aggiungere 25 microlitri di septine diluite in SSB e visualizzare al microscopio TIRF.