Saggio di separazione di fase proteica: un metodo optogenetico per la separazione di fase proteica legante l'RNA mutante nei motoneuroni spinali di larve di zebrafish

0 visualizzazioni4:38 min • July 8th, 2025

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Le proteine nucleari leganti l'RNA, RBP, sono proteine multifunzionali composte da regioni ordinate con struttura tridimensionale ben definita e regioni meno stabili e intrinsecamente disordinate, IDR.

In diverse malattie neurodegenerative, le mutazioni specifiche dell'IDR causano la localizzazione errata delle RBP nel citoplasma e si impegnano in modo aberrante in interazioni deboli, formando inclusioni dinamiche e prive di membrana, un fenomeno chiamato separazione di fase. Alla fine, queste inclusioni maturano in aggregati tossici e insolubili, con conseguente disfunzione neuronale e degenerazione.

Per studiare la separazione di fase RBP in vivo utilizzando l'optogenetica, iniziare con una larva di zebrafish transgenica anestetizzata e dechorionata, che esprime un RBP mutato IDR fuso con un reporter fluorescente e un dominio fotorecettore sensibile alla luce blu, in un tampone adatto.

Quindi, montare la larva lateralmente su una goccia di agarosio fuso per l'imaging del midollo spinale. Lasciare solidificare l'agarosio, immobilizzando la larva. Utilizzando un microscopio confocale, acquisire immagini del midollo spinale per visualizzare le RBP fluorescenti, localizzate all'interno dei nuclei neuronali.

Ora, rimuovere la larva dall'agarosio e trasferirla in una piastra multipozzetto contenente tampone. Posizionare la piastra su un pannello a diodi emettitori di luce blu ottimizzato e illuminare la larva.

Dopo l'esposizione alla luce blu, le RBP mutanti si localizzano erroneamente nel citoplasma, dove i domini dei fotorecettori oligomerizzano e formano cluster, portando gli IDR delle RBP in stretta vicinanza e facilitando la loro autoassociazione in inclusioni senza membrana.

Dopo l'illuminazione, incorporare la larva nell'agarosio e immaginare il suo midollo spinale. Le RBP fluorescenti appaiono come compartimenti discreti dispersi all'interno del citoplasma neuronale.

Per l'imaging delle larve di zebrafish che esprimono TDP-43 optogenetica, dechorionate il pesce doppiamente transgenico e anestetizzarle in tampone E3 contenente 250 microgrammi per microlitro di Tricane.

Successivamente, preriscaldare l'agarosio a bassa temperatura di fusione all'1% contenente 250 microgrammi per microlitro di etil 3-amminobenzoato metanosolfonato a 42 gradi Celsius, quindi mettere una goccia di agarosio sul piatto di base in vetro. Il diametro della goccia di agarosio a forma di cupola sul piatto di vetro dovrebbe essere compreso tra 8 e 10 millimetri.

Successivamente, utilizzando una pipetta Pasteur, aggiungere il pesce anestetizzato all'agarosio sul piatto di base in vetro. Ridurre al minimo la quantità di tampone E3 aggiunto all'agarosio insieme al pesce. Quindi, mescolare pipettando alcune volte.

Durante la solidificazione dell'agarosio, mantenere il pesce su un lato utilizzando un ago da siringa, in modo che il midollo spinale sia in una posizione orizzontale appropriata. Dopo che l'agarosio si è solidificato, aggiungere un paio di gocce di tampone E3 sul pesce montato sull'agarosio a forma di cupola.

Utilizzando un microscopio confocale dotato di un obiettivo a immersione in acqua 20x, è possibile acquisire sezioni Z confocali seriali del midollo spinale. Includi la cloaca sul lato ventrale del pesce nelle regioni di interesse come riferimento per identificare e confrontare i segmenti spinali attraverso i punti temporali.

Non appena l'imaging è completo, utilizzare un ago da siringa per rompere con cura l'agarosio e rimuovere il pesce dall'agarosio. Mantenere il tempo di immersione del pesce nell'agarosio il più breve possibile, anche se l'inclusione dell'agarosio per meno di 30 minuti non influisce sulla vitalità del pesce.

Aggiungere 7,5 millilitri di tampone E3 a un pozzetto di un piatto a 6 pozzetti e posizionare il pesce a doppia transgenica in quel pozzetto. Quindi, posiziona la parabola sul pannello LED, mantenendo la parabola e il pannello LED a 5 millimetri di distanza con un distanziatore, e accendi la luce LED blu.

Conserva alcuni pesci a doppia transgenica in un piatto separato a 6 pozzetti coperto con un foglio di alluminio per pesci di controllo non illuminati. Dopo il tempo di illuminazione desiderato, eseguire l'imaging del midollo spinale del pesce illuminato come dimostrato in precedenza.

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Ultimo aggiornamento: 15 agosto 2026