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Iniziare il test di alimentazione delle zanzare preparando un pasto di sangue, aggiungendo la concentrazione desiderata di un composto di prova attivo nel sangue di coniglio defibrinato. Il pasto di sangue è privo di fibrina, prevenendo la coagulazione del sangue.
Caricare questo pasto di sangue nella porta di erogazione di un'unità di alimentazione a membrana. Collegalo a un'unità di riscaldamento, mantenendo il sangue a una temperatura ottimale. Rivestire la membrana con la soluzione di acido lattico.
Posiziona questa unità in una gabbia con zanzare femmine adulte e pre-affamate per aumentare le possibilità di alimentazione. Incubare al buio. L'acido lattico attira le zanzare verso l'unità di alimentazione. Le condizioni di buio li incoraggiano a nutrirsi.
Trasferisci le zanzare nutrite con sangue in una camera di crescita. Dopo la digestione del pasto di sangue, il composto di prova attivo entra nel corpo della zanzara, colpendo vari organi e causandone la morte.
Conta il numero di zanzare morte e calcola il tasso di mortalità. Valutare l'effetto della sostanza chimica in esame sul sistema riproduttivo delle zanzare sopravvissute introducendo un portauova nella camera.
Le zanzare femmine utilizzano le proteine del pasto di sangue e depongono le uova, che vengono raccolte all'interno della tazza. Contare il numero di uova, stimando la diminuzione della fecondità - capacità di deporre le uova.
L'elevata mortalità e la bassa fecondità corrispondono alla capacità insetticida del composto.
Raccogli circa 150 zanzare femmine adulte di quattro o cinque giorni con un aspiratore e trasferiscile in una gabbia separata. Rimuovere la fonte di zucchero da 1 a 24 ore prima del test di alimentazione.
Preparare una soluzione madre da 80 millimolari del composto in esame in acqua. Quindi, diluirlo in serie con acqua per ottenere soluzioni stock di lavoro delle concentrazioni desiderate.
Per ottenere le concentrazioni di test desiderate, aggiungere 40 microlitri di ciascuna diluizione a 960 microlitri di sangue di coniglio defibrinato in una provetta da 1,5 millilitri e mescolare mediante pipettaggio. Posizionare un filtro a membrana su un'unità di alimentazione e sigillarlo con un anello di gomma.
Quindi, utilizzare una pipetta per trasferire 1 millilitro di sangue con la soluzione analitica attraverso la porta di erogazione situata sul retro dell'unità di alimentazione. Collegare l'unità di alimentazione a un'unità di riscaldamento. Quindi, tamponare delicatamente la superficie della membrana con una soluzione di acido lattico al 10% appena preparata.
Posizionare l'unità di alimentazione nella gabbia. Copri la gabbia con un panno scuro e lascia che le zanzare si nutrano per un'ora. Dopo che le zanzare si sono nutrite, metti la gabbia in frigorifero a 4 gradi Celsius per cinque minuti per anestetizzare le zanzare. Quindi, conta e registra il numero totale di zanzare nella gabbia.
Esaminando l'addome, conta e registra il numero totale di zanzare femmine completamente e parzialmente nutrite. Per dose si dovrebbe ottenere un minimo di 50 zanzare alimentate con sangue. Rimuovi tutte le zanzare che non si sono nutrite. Quindi, trasferisci la gabbia in una camera di crescita e usa un foglio di valutazione per registrare il numero di zanzare morte nei punti temporali appropriati.
Il 3° giorno dopo l'alimentazione del sangue, metti un portauovo nella gabbia per 72 ore. Utilizzare un microscopio da dissezione per contare il numero totale di ovuli prodotti per trattamento.