Biodosaggio cellulare Caco-2: un metodo in vitro per misurare la biodisponibilità del ferro in fonti alimentari complesse

0 visualizzazioni3:56 min • July 8th, 2025

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Gli enterociti sono cellule specializzate dell'intestino tenue che svolgono un ruolo cruciale nell'assorbimento dei nutrienti, compreso l'assorbimento del ferro.

Per valutare la biodisponibilità del ferro - la percentuale di ferro ingerito accessibile per le funzioni fisiologiche - prelevare una soluzione acidificata contenente il campione di cibo. Ora, aggiungi la pepsina, un enzima proteico per la digestione, dallo stomaco. A pH acido, la pepsina avvia la digestione gastrica scomponendo le proteine alimentari complesse in piccoli peptidi.

Aggiungere bicarbonato di sodio per aumentare il pH e fermare la digestione gastrica. Aggiungere una soluzione contenente enzimi pancreatici e bile per simulare la digestione intestinale. Trasferire la miscela nella parte superiore di un sistema di coltura cellulare a due camere.

La camera inferiore contiene enterociti differenziati da Caco-2, una linea cellulare di adenocarcinoma del colon. Una membrana per dialisi separa la camera superiore da quella inferiore. La membrana permette la diffusione di specie a basso peso molecolare.

La miscela di enzimi pancreatici e bile nella camera superiore scompone carboidrati, proteine e lipidi in subunità più piccole, rilasciando ferro sotto forma di ioni ferrici.

Gli stimolatori di biodisponibilità negli alimenti convertono gli ioni ferrici rilasciati allo stato ferroso, aumentandone la solubilità. Questi ioni passano attraverso la membrana per raggiungere la camera inferiore.

I trasportatori di ioni metallici nella membrana cellulare degli enterociti aiutano nell'assorbimento degli ioni ferrosi. Una volta all'interno, il ferro si lega all'apoferritina, una proteina di riserva del ferro che dà origine a un complesso, la ferritina. Raccogliere le cellule per quantificare la ferritina per valutare la biodisponibilità del ferro.

Pesare il campione in una provetta da centrifuga sterile da 50 millilitri. Regolare il pH utilizzando acido cloridrico e aggiungere 10 millilitri di soluzione fisiologica contenente 140 millimolari di cloruro di sodio e 5 millimolari di cloruro di potassio. Quindi, impostare il processo di digestione gastrica aggiungendo 0,5 millilitri della soluzione di pepsina suina preparata al campione.

Successivamente, incubare su uno shaker a dondolo a un'impostazione delicata, per 1 ora a 37 gradi Celsius, e avviare il processo di digestione intestinale di ciascun campione regolando il pH a 5,5-6,0 con bicarbonato di sodio molare da 1,0.

Aggiungere 2,5 millilitri di soluzione biliare pancreatica a ciascuna provetta del campione e regolare il pH a 6,9-7,0 con 1,0 molari di bicarbonato di sodio.

Utilizzando la soluzione contenente 140 millimolari di cloruro di sodio e 5 millimolari di cloruro di potassio, aggiungere liquido in modo che ogni provetta contenga esattamente 15 grammi di materiale totale.

Ora, trasferire 1,5 millilitri di ciascun digestato intestinale nella camera superiore del pozzetto contenente le cellule Caco-2 della piastra di coltura a 6 pozzetti. Riposizionare il coperchio della piastra e incubare a 37 gradi Celsius in anidride carbonica al 5% su un agitatore a dondolo a 6 oscillazioni al minuto, per 2 ore.

Rimuovere l'anello di inserimento con il digestato. Quindi, aggiungere 1 millilitro di terreno essenziale minimo a pH 7 a ciascun pozzetto e tenere la piastra nell'incubatore per 22 ore.

Ora, rimuovere il terreno di coltura cellulare e aggiungere 2 millilitri di acqua da 18 mega ohm (MΩ) al monostrato cellulare. Trasferirlo in un sonicatore e raccogliere l'intero lisato cellulare in provette da microcentrifuga per l'analisi delle proteine cellulari e della ferritina cellulare.

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Ultimo aggiornamento: 1 agosto 2026