$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Quando esposte a un allergene - antigene non patogeno - le cellule presentanti l'antigene elaborano e presentano l'allergene ai linfociti T helper di tipo 2. Questi linfociti T innescano la differenziazione dei linfociti B in plasmacellule e producono immunoglobuline E, IgE, anticorpi che si legano ai recettori FC IgE specifici ad alta affinità sulla superficie dei basofili circolanti, cellule secretorie contenenti granuli.
Dopo la successiva esposizione all'allergene, i complessi IgE-Fc riconoscono e si legano all'allergene, attivando i basofili per rilasciare granuli comprendenti mediatori come citochine ed enzimi lisosomiali tra cui la β-esosaminidasi, evocando una potente risposta infiammatoria.
Per esaminare il potenziale allergico di un antigene del test in vitro, iniziare con una sospensione di basofili cancerosi di ratto trasdotti che esprimono recettori FC IgE specifici per l'uomo. Trattare con siero umano contenente IgE da un donatore allergico. Gli anticorpi IgE si legano e sensibilizzano i recettori Fc basofili.
Successivamente, aggiungere un tampone e un volume adeguato di antigene del test ai basofili sensibilizzati. L'antigene, a seconda della sua affinità per le IgE legate ai recettori Fc, si lega agli anticorpi e avvia la degranulazione dei basofili, rilasciando nella soluzione mediatori tra cui la β-esosaminidasi.
Raccogliere la soluzione in una piastra multipozzetto fresca contenente un substrato fluorogenico di β-esosaminidasi e incubare. La β-esosaminidasi idrolizza il substrato, generando un prodotto fluorescente. Dopo l'incubazione, aggiungere un tampone ad alto pH per inibire l'attività della β-esosaminidasi e fermare la reazione.
Utilizzando un lettore di micropiastre, misurare la fluorescenza del prodotto formato, indicativo dell'attività della β-esosaminidasi rilasciata e, a sua volta, il potenziale allergico dell'antigene di indurre la degranulazione dei basofili.
Centrifugare la sospensione di Ag8/siero pre-incubata e trasferire 50 microlitri della sospensione di Ag8/siero centrifugata in ciascun pozzetto contenente cellule RBL umanizzate senza disturbare il pellet di cellule Ag8.
Utilizzare cellule sensibilizzate, non stimolate, senza antigene, come controllo senza antigene per l'indicazione del plateau o del fondo del segnale inferiore e non sensibilizzare i pozzetti di controllo del fondo e della lisi massima. Coprire la piastra con il coperchio e incubare per una notte a 37 gradi Celsius e dal 5% al 7% di anidride carbonica.
Aspirare il terreno cellulare contenente sieri. Capovolgere e picchiettare la piastra sulla carta assorbente per svuotare la piastra per il lavaggio delle cellule RBL umanizzate. Lavare le cellule tre volte aggiungendo 200 microlitri di tampone di Tyrode per pozzetto e incubare per circa 30 secondi per lavaggio, per i primi due lavaggi. Dopo aver aggiunto il tampone di Tyrode per la terza volta, aspirare il tampone e lasciare la soluzione nei pozzetti, fino al momento di aggiungere la diluizione dell'antigene.
Trasferire 100 microlitri di soluzione antigenica in ciascun pozzetto contenente le cellule RBL presensibilizzate e umanizzate, ma non stimolare la massima lisi e le cellule di fondo non sensibilizzate con l'antigene.
Aggiungere 100 microlitri di tampone di Tyrode nei pozzetti di controllo della lisi massima, nei pozzetti di controllo di fondo non sensibilizzati e nei pozzetti sensibilizzati senza antigene. Incubare le cellule per un'ora a 37 gradi Celsius e dal 5% al 7% di anidride carbonica.
Trattare i pozzetti di controllo della lisi massima con 10 microlitri di Triton X-100 al 10% per pozzetto e mescolare correttamente per lisare completamente le cellule per il rilascio del 100% di beta-esosaminidasi. Aggiungere 50 microlitri di soluzione di substrato in una nuova piastra a 96 pozzetti non vincolante.
Trasferire 50 microlitri di surnatante dai pozzetti della piastra contenente cellule RBL umanizzate nella nuova piastra contenente la soluzione del substrato e incubare la piastra per un'ora a 37 gradi Celsius per consentire la conversione del substrato fluorogenico.
Aggiungere 100 microlitri di soluzione di arresto per pozzetto e misurare la fluorescenza come descritto nel manoscritto del testo.