Saggio di persister in vitro: un metodo per valutare l'effetto degli osmoliti sulla persistenza batterica

0 visualizzazioni4:54 min • July 8th, 2025

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In caso di esposizione a condizioni ambientali dannose, un sottogruppo di batteri entra in uno stato di bassa attività metabolica, eludendo gli effetti dannosi. Questi batteri, chiamati persistenti, possono tollerare l'esposizione transitoria ad alte concentrazioni di antibiotici.

Per studiare l'effetto degli osmoliti - piccoli soluti organici - sulla persistenza batterica, in primo luogo, si ottiene una coltura cellulare batterica in fase esponenziale con persistenti preesistenti al di sotto del limite di rilevabilità, sospesi in terreno.

Quindi, trasferire la sospensione nei pozzetti contenenti osmolita di una piastra di microarray. Mantieni una serie di pozzetti senza osmolito come controllo. Sigillare la piastra con una membrana permeabile ai gas per consentire una rapida diffusione del gas per la crescita cellulare e l'incubazione.

Gli osmoliti nel mezzo a concentrazioni appropriate inducono stress osmotico, innescando alcune cellule a riprogrammare il loro metabolismo cellulare da una crescita rapida a una lenta, formando persistenti.

A questo punto, trasferire le cellule trattate con osmolito e le cellule di controllo in una piastra di dosaggio persistente contenente antibiotici. Sigillare la piastra del saggio persistenter e incubare.

In presenza di antibiotici, le cellule normali vanno incontro alla morte cellulare, mentre le persistenti, essendo tolleranti agli antibiotici, sopravvivono. Infine, raccogliere una piccola frazione delle cellule, diluirle in serie con il tampone e posizionarle su una piastra di agar priva di antibiotici. Incubare la piastra.

In assenza di antibiotici, i persistenti riprendono a crescere e proliferano, formando colonie. Conta il numero di colonie sulla piastra di agar.

Un numero maggiore di colonie rispetto al trattamento post-antibiotico senza controllo dell'osmolita suggerisce un effetto positivo degli osmoliti sulla formazione di persister.

Inizia preparando colture cellulari di microarray.

Trasferire 250 microlitri di celle in fase esponenziale in 25 millilitri di terreno LB modificato fresco, in una provetta da centrifuga da 50 millilitri. Quindi, mescolare delicatamente la sospensione cellulare per renderla omogenea.

Trasferire la sospensione cellulare diluita in un serbatoio sterile da 50 millilitri. Utilizzando una pipetta multicanale, trasferire 150 microlitri di sospensione cellulare in ciascun pozzetto di una piastra per microarray, contenente varie sostanze chimiche. I microarray possono anche essere generati manualmente, seguendo il metodo descritto nel manoscritto del testo.

Coprire la piastra del microarray con una membrana sigillante permeabile ai gas e incubarla in un agitatore orbitale a 37 gradi Celsius e 250 giri/min per 24 ore.

Per realizzare le piastre di saggio Persister, preparare 25 millilitri di terreno LB modificato, contenente 5 microgrammi per millilitro di ofloxacina in una provetta da centrifuga da 50 millilitri, e trasferire questo terreno in un serbatoio sterile.

Trasferire 190 microlitri del terreno LB modificato in ciascun pozzetto di una piastra generica a fondo piatto da 96 pozzetti. Dopo l'incubazione di 24 ore, rimuovere il microarray dall'agitatore e trasferire 10 microlitri di colture cellulari dal microarray ai pozzetti della piastra di saggio Persister, contenente terreno LB modificato con ofloxacina.

Prelevare 10 microlitri di sospensioni cellulari dalla piastra del saggio Persister e diluirle in serie 3 volte in 290 microlitri di soluzione PBS, utilizzando una piastra a fondo tondo a 96 pozzetti e una pipetta multicanale. Quindi, individuare 10 microlitri di tutte le sospensioni cellulari diluite in serie su piastre di agar fresche prive di antibiotici.

Coprire la piastra del saggio Persister con una membrana sigillante permeabile ai gas e incubarla in un agitatore orbitale a 37 gradi Celsius e 250 giri/min per sei ore.

Dopo l'incubazione di 6 ore, ripetere la diluizione seriale e la spotting su piastre di agar. Incubare le piastre di agar per 16 ore a 37 gradi Celsius, quindi contare le unità formanti colonie, o CFU. Utilizzare i livelli di CFU prima e sei ore dopo il trattamento antibiotico per calcolare la frazione Persister in ciascun pozzetto.

I conteggi delle CFU prima del trattamento con OFX aiutano anche a valutare gli effetti degli osmoliti sulla vitalità di E. coli.

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Ultimo aggiornamento: 1 agosto 2026