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La competizione intraspecifica tra due ceppi batterici fa sì che il ceppo inibitore rilasci molecole effettrici tossiche che uccidono la popolazione bersaglio.
Per visualizzare le interazioni competitive tra due ceppi batterici gram-negativi, iniziare con una co-coltura comprendente un inibitore e un ceppo bersaglio in quantità uguali.
Entrambi i ceppi sono progettati per esprimere proteine fluorescenti di colore diverso per differenziarle visivamente durante l'imaging. Concentrare la coltura per massimizzare il contatto cellula-cellula tra i ceppi batterici. Individua la coltura mista su un vetrino coprioggetti posto sul fondo di un piatto.
Posiziona un tampone di agarosio solidificato sul punto, permettendo ai batteri di immobilizzarsi, e coprilo con un altro vetrino coprioggetti. Incubare per consentire la crescita batterica, simulando le condizioni di affollamento batterico.
L'involucro cellulare del ceppo inibitorio contiene un sistema secretorio specializzato: il sistema di secrezione di tipo sei, o T6SS. Comprende un complesso di membrane, una piastra di base e un tubo interno circondato da una guaina contrattile.
Dopo aver rilevato il contatto, il ceppo inibitore attiva il suo T6SS, che provoca la contrazione della guaina e l'espulsione del tubo, portando infine alla perforazione della membrana cellulare batterica bersaglio. Ciò facilita la consegna delle molecole effettrici nei batteri bersaglio, portandoli alla morte.
Immagine utilizzando un microscopio a fluorescenza per identificare ceppi batterici a fluorescenza diversi. Una morfologia rotonda dei batteri bersaglio e una riduzione del loro numero confermano il successo dell'uccisione da parte dei batteri inibitori.
Misura e registra la densità ottica a 600 nanometri per tutti i campioni. Normalizzare ogni campione a una densità ottica di 1 diluendo la coltura con terreno LBS.
Mescola i due ceppi concorrenti in un rapporto uguale aggiungendo 30 microlitri di ciascun ceppo normalizzato a un tubo da 1,5 millilitri etichettato. Agitare la coltura del ceppo misto per 1 o 2 secondi. Mescola i ceppi concorrenti per ogni replica biologica e trattamento per generare un totale di 4 provette a ceppo misto.
Concentrare ogni coltura mista tre volte mediante centrifugazione, per garantire cellule concorrenti sufficientemente dense per l'uccisione dipendente dal contatto durante la co-incubazione. Scartare il surnatante. Risospendere ogni pellet e 20 microlitri di terreno LBS ed eseguire le procedure di concentrazione per ogni campione.
Se si esegue l'imaging con un microscopio invertito, iniziare individuando due microlitri di una coltura mista sul fondo del vetrino coprioggetti #1,5 di una capsula di Petri da 35 millimetri e posizionare il tampone di agarosio sul punto di co-incubazione. Posizionare un vetrino coprioggetti circolare da 12 millimetri sul tampone di agarosio. Ripetere l'individuazione e il posizionamento del vetrino coprioggetto per le restanti 3 colture miste, il che si tradurrà in 4 piatti da visualizzare.
Prima di procedere, lasciare riposare i vetrini sul banco di lavoro per circa 5 minuti per consentire alle cellule di depositarsi sul tampone di agar, per evitare movimenti durante il processo di imaging.
Inizia concentrandoti sulle cellule usando DIC per ridurre al minimo gli effetti del fotosbiancamento. Sulla base della dimensione media di una singola cellula batterica, utilizzare un obiettivo per olio 100x. Regola il tempo di esposizione e le impostazioni di acquisizione per ciascun canale con un rilevamento minimo dello sfondo. Seleziona almeno 5 campi visivi e acquisisci le immagini in ogni canale appropriato.