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Alcune malattie neurodegenerative ereditarie coinvolgono proteine con una lunga serie di residui di glutammina, chiamate poliglutammina, polyQ, tratto. Queste proteine strutturalmente instabili e inclini al ripiegamento errato alla fine si accumulano per formare aggregati tossici, influenzando negativamente la funzione neuronale e la sopravvivenza.
Per valutare il potenziale protettivo di un composto in esame sulla sopravvivenza neuronale contro la neurotossicità mediata da polyQ, iniziare con una sospensione di larve transgeniche di Caenorhabditis elegans che esprimono proteine fluorescenti e polyQ in neuroni ASH (chemiosensoriali accoppiati).
Trasferire nei pozzetti di una piastra a più pozzetti contenente terreno e fonte di cibo batterico. Aggiungere il composto di prova a una serie di pozzetti. Sigillare la piastra, riducendo al minimo la disidratazione e la contaminazione dei fluidi. Incubare.
Durante lo sviluppo dei vermi, le proteine polyQ formano aggregati nei neuroni ASH, portando alla neurotossicità associata all'aggregazione e influendo sulla sopravvivenza neuronale.
Se presente, il composto in esame entra nei neuroni e, in base alla sua capacità neuroprotettiva, può sopprimere l'aggregazione della proteina polyQ, mitigando la neurotossicità associata e migliorando la sopravvivenza neuronale.
Raccogli i vermi adulti e centrifuga. Risospendere i vermi in un tampone adatto e trasferirli su un tampone di agarosio con un prodotto chimico appropriato per l'immobilizzazione.
Utilizzando un microscopio a fluorescenza, visualizza i neuroni ASH per rilevare le proteine fluorescenti, un indicatore della sopravvivenza dei neuroni.
Una fluorescenza più elevata nel trattamento rispetto ai pozzetti di controllo suggerisce un aumento del tasso di sopravvivenza neuronale, indicando il potenziale neuroprotettivo del composto in esame nel sopprimere l'aggregazione polyQ e la neurotossicità associata.
Per preparare i nematodi per il test di neurotossicità polyQ, trasferire da 300 a 500 larve L1 sincronizzate di nematodi HA759 in ciascun pozzetto di una piastra a 48 pozzetti con 500 microlitri di terreno S contenente il ceppo OP50 di E. coli e 5 milligrammi per millilitro di astragalano. Dopo aver sigillato le piastre, incubare, raccogliere e risospendere i nematodi in tampone M9, come dimostrato.
Ora prepara un tampone di agarosio aggiungendo 2 grammi di agarosio a 100 millilitri di tampone M9 e riscalda la soluzione in un forno a microonde fino quasi all'ebollizione. Erogare 0,5 millilitri di agarosio fuso al centro di un vetrino per microscopia di 1 millimetro di spessore, posto tra due pezzi di lastre di vetro di 2 millimetri di spessore, coprendo con un altro vetrino verticalmente. Rimuovere delicatamente il vetrino superiore una volta che l'agarosio si è raffreddato e solidificato.
Iniziare il test di sopravvivenza neuronale ASH aggiungendo una goccia di 20 millimolare di azoturo di sodio sul tampone di agarosio, quindi trasferendo da 15 a 20 nematodi HA759 nella goccia per immobilizzarli. Posizionare delicatamente un vetrino coprioggetti sui nematodi.
Ora, tieni il vetrino sotto un microscopio a fluorescenza dotato di una fotocamera digitale. Seleziona una lente dell'obiettivo 40x e un filtro FITC per rilevare i neuroni ASH positivi alla GFP nella regione della testa dei nematodi.
Seleziona più di 50 nematodi in ciascun gruppo in modo casuale, per contare il numero di nematodi con neuroni ASH bilaterali marcati con GFP nella loro regione della testa e quindi calcolare il tasso di sopravvivenza dei neuroni ASH.