Saggio radiomarcato di captazione degli amminoacidi per quantificare l'assorbimento cellulare degli amminoacidi

0 visualizzazioni4:04 min • July 8th, 2025

I trasportatori di amminoacidi sono proteine legate alla membrana che mediano il trasferimento di aminoacidi attraverso le membrane cellulari, regolando i processi cellulari vitali.

Per studiare l'assorbimento degli aminoacidi in vitro, prelevare una coltura di cellule stromali derivate dal midollo osseo di topo. Aspirare il terreno di coltura. Aggiungi un tampone preriscaldato integrato con glutammina – un amminoacido – marcato con idrogeno radioattivo. Incubare per la durata richiesta.

Il tampone preriscaldato fornisce la temperatura fisiologica e un pH appropriato necessario per l'assorbimento cellulare della glutammina. I trasportatori della glutammina sono costituiti da domini di trasporto, responsabili della traslocazione del substrato tramite co-trasporto accoppiato a ioni sodio, e domini di scaffold ancorati alla membrana.

Il dominio di trasporto si lega alla glutammina radiomarcata insieme agli ioni sodio dal tampone. Dopo il legame, rilascia le molecole nel citoplasma. Contemporaneamente, il dominio di trasporto trasloca gli ioni sodio intracellulari e gli amminoacidi neutri all'esterno della cellula, determinando l'omeostasi cellulare.

Lavare le cellule con un tampone ghiacciato, terminando la reazione e rimuovendo l'eventuale glutammina radiomarcata extracellulare. Aggiungi una soluzione detergente. Il detergente lisa le cellule, provocando il rilascio di glutammina radiomarcata intracellulare.

Centrifugare il lisato. Aggiungere il surnatante contenente glutammina in una fiala con un cocktail di scintillazione e posizionare la fiala all'interno di un contatore di scintillazione.

Le molecole di glutammina radiomarcate emettono particelle beta ad alta energia. Gli scintillatori nel cocktail assorbono le particelle ed emettono impulsi luminosi che vengono rilevati dal contatore di scintillazione.

Misurare la radioattività per stimare l'assorbimento cellulare di glutammina.

Per iniziare il saggio di captazione degli aminoacidi, piastra 5 x 104 cellule ST2, in ciascun pozzetto di una piastra di coltura tissutale a 12 pozzetti in terreno alfa-MEM integrata con FBS, penicillina e streptomicina. Piastra pozzetti extra di cellule per quantificare il numero di cellule per condizione per le normalizzazioni.

Successivamente, incubare le cellule in un incubatore per colture cellulari umidificato a 37 gradi Celsius con il 5% di anidride carbonica per due o tre giorni fino a quando non diventano confluenti. Dopo l'incubazione, aspirare il terreno e lavare le cellule due volte con un millilitro di PBS a pH 7,4. Quindi, aspirare il PBS prima di lavare le cellule una volta, con un millilitro di Krebs Ringers HEPES, o KRH.

Incubare le cellule con 0,5 millilitri di KRH appena preparato contenente quattro microcurie per millilitro di terreno di lavoro L-[3,4-3 H]-glutammina per cinque minuti. Dopo l'incubazione, raccogliere il mezzo radioattivo per erogarlo nel contenitore dei rifiuti liquidi. Quindi, lavare le cellule tre volte con KRH ghiacciato per terminare la reazione.

Quindi, aggiungere un millilitro di dodecil solfato di sodio all'1% a ciascun pozzetto e triturare la miscela 10 volte per lisare e omogeneizzare le cellule. Quindi, trasferire i lisati cellulari in una provetta da 1,5 millilitri e chiarificare il lisato centrifugando a una velocità minima di 10.000 g per 10 minuti.

Trasferire il surnatante in una fiala di scintillazione, contenente otto millilitri di soluzione di scintillazione, e leggere la radioattività in conteggi al minuto utilizzando un contatore di scintillazione.

Dalle restanti piastre di cellule non radioattive, tripsinizzare, risospendere e contare le cellule per stimare il numero di cellule nelle colture radioattive lisate. Utilizzando un emocitometro, contare il numero di cellule per pozzetto non radioattivo per ogni condizione sperimentale.

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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026