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Per la misurazione continua del comportamento delle celle utilizzando l'analisi delle celle in tempo reale, RTCA, è possibile ottenere una piastra per microtitolazione RTCA contenente array di microelettrodi d'oro per la misurazione dell'impedenza incorporati nel fondo del pozzetto. Aggiungere con cautela il terreno di coltura cellulare ai pozzetti.
All'interno del mezzo elettricamente conduttivo, applicare un potenziale elettrico debole attraverso i microelettrodi. Il potenziale provoca il flusso di corrente elettrica tra i microelettrodi, facilitando la misurazione dell'impedenza di base, la resistenza elettrica intrinseca del fluido.
Pipettare le concentrazioni desiderate di sospensione di cellule di mammifero nei pozzetti contenenti il terreno. Lasciare che le cellule si distribuiscano uniformemente nel pozzetto.
Durante l'incubazione, le cellule aderiscono al fondo del pozzetto. Le cellule aderenti sui microelettrodi fungono da isolante, limitando il flusso di corrente e aumentando l'impedenza.
Gradualmente, le cellule proliferano sui microelettrodi, portando ad un aumento dell'impedenza esponenziale.
Dopo la formazione dello strato cellulare confluente, le cellule vanno incontro a privazione di nutrienti e vanno incontro alla morte. Di conseguenza, le celle si staccano dai microelettrodi, diminuendo l'impedenza.
La misurazione continua dell'impedenza facilita il monitoraggio in tempo reale degli eventi cellulari, tra cui la proliferazione e la morte cellulare.
Per determinare la quantità di cellule appropriata per l'infezione cellulare, preparare colture cellulari MDCK confluenti per 24 ore, circa l'80%, come dimostrato, prima di lavare le cellule con PBS e raccoglierle con un'incubazione di 45 minuti in 3 millilitri di tripsina-EDTA allo 0,25% per pallone a 37 gradi Celsius.
Quando le cellule si sono staccate, interrompere la reazione con 7 millilitri di terreno di coltura fresco per matraccio e contare le cellule di ciascuna coltura. Diluire le cellule a 4 x 105 cellule per millilitro di terreno di coltura cellulare ed eseguire due diluizioni seriali delle cellule, come indicato.
Posizionare una E-plate a temperatura ambiente per diversi minuti, prima di aggiungere 100 microlitri di terreno di coltura cellulare a ciascun pozzetto senza toccare gli elettrodi della E-plate. Sbloccare le culle e inserire l'estremità anteriore della piastra nella tasca della culla dello strumento di misura dell'impedenza. Chiudere lo sportello dell'incubatrice e aprire il software.
In "Impostazione predefinita del modello di esperimento", evidenzia le culle selezionate e fai doppio clic sulla pagina superiore per inserire il nome dell'esperimento. Fare clic su "Layout" e inserire le informazioni necessarie sul campione per ogni pozzetto selezionato della piastra. Fai clic su "Programma" | "Passi" |, e "Aggiungi un passaggio". Il software aggiungerà automaticamente un passo di 1 secondo per misurare l'impedenza di fondo.
Fai clic su "Esegui" e "Avvia / Continua". Fare clic su "Traccia" e "Aggiungi" per selezionare i pozzetti appropriati, confermando che l'impedenza di fondo è compresa tra 0,1 e 0,1 negativo, prima di procedere al passaggio successivo.
Quindi, rimuovere la piastra dalla culla e aggiungere 100 microlitri di ciascuna sospensione cellulare nei pozzetti appropriati in duplicato. Lasciare la E-plate nella cappa a flusso laminare per 30 minuti a temperatura ambiente per consentire una distribuzione uniforme delle cellule sul fondo dei pozzetti, prima di caricare la E-plate nella tasca della culla. Fai clic su "Programma" e "Aggiungi passaggio" e inserisci i valori per monitorare le celle ogni 30 minuti per 200 ripetizioni prima di selezionare "Avvia / Continua".
Per controllare e tracciare i dati sull'impedenza cellulare, fare clic su "Traccia" e selezionare la concentrazione di cellule che si trova appena prima della fase stazionaria 24 ore dopo la semina, per ottenere cellule che sono ancora in una fase di crescita durante l'infezione virale.