$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
La
reazione a catena della polimerasi di fusione ad alta risoluzione, HRM-PCR, rileva le variazioni di sequenza del DNA a doppio filamento e del dsDNA con elevata precisione.
Inizia con una miscela master contenente Taq polimerasi inattiva, desossiribonucleotide trifosfati - dNTP - e il colorante reporter fluorescente. Aggiungere gli inneschi avanti e indietro. Pipettare la miscela nei pozzetti di una piastra PCR.
Aggiungi il modello dsDNA. Sigillare la piastra, impedendo l'evaporazione della miscela. Inizia la PCR.
L'elevata temperatura di denaturazione denatura il dsDNA in DNA a filamento singolo, ssDNA, e attiva la polimerasi. La reazione viene quindi raffreddata alla temperatura di ricottura, facilitando il legame diretto e inverso del primer agli ssDNA tramite l'appaiamento di basi complementari sito-specifiche.
La polimerasi attivata viene reclutata, estendendo il duplex DNA-primer mediante l'aggiunta di dNTP.
Il colorante reporter fluorescente, un colorante specifico per il dsDNA presente in concentrazioni saturanti, si intercala all'interno dell'intero duplex, fluorescente. Il duplex viene sottoposto a più cicli di PCR, producendo diversi frammenti contenenti varianti.
Dopo la PCR, eseguire l'analisi della curva di fusione aumentando costantemente la temperatura di reazione nel tempo.
A seconda della sequenza nucleotidica, il sito contenente la variante può denaturarsi per primo, rilasciando il colorante. Poiché i restanti siti di legame del colorante sono saturi, il colorante non riesce a reintercalarsi, riducendo l'intensità della fluorescenza. Inoltre, il dsDNA si dissocia in ssDNA dopo il riscaldamento incrementale.
Identificare la temperatura di fusione, alla quale metà del dsDNA si denatura in ssDNA con una forte diminuzione della fluorescenza. Uno spostamento nella curva di fusione dei frammenti di DNA amplificati identifica le variazioni della sequenza nucleotidica del campione.
Per eseguire il protocollo HRM-PCR, in primo luogo, diluire i campioni di DNA in provette da 1,5 millilitri con acqua a una concentrazione di 10 nanogrammi per microlitro. Successivamente, diluire le soluzioni di primer scongelate in provette da 1,5 millilitri con acqua alla stessa concentrazione di 6 micromolari. Scongelare le soluzioni del kit HRM-PCR e mescolare accuratamente a vortice per garantire il recupero di tutto il contenuto.
Centrifugare brevemente le tre fiale contenenti la miscela enzimatica con il colorante legante il DNA, il cloruro di magnesio e l'acqua in una microcentrifuga prima di aprirle. In una provetta da 1,5 millilitri a temperatura ambiente, utilizzare i componenti per preparare la miscela PCR per la reazione da 120 microlitri, come descritto nel protocollo di testo. Mescolare accuratamente a vortice.
È fondamentale che tu lavori con attenzione, navigazione, secondo le buone pratiche in biologia molecolare.
Pipettare 19 microlitri della miscela PCR in ciascun pozzetto di una piastra multipozzetto bianca. Aggiungere 1 microlitro del modello di DNA aggiustato per la concentrazione, quindi sigillare la piastra multipozzetto bianca con un foglio sigillante. Centrifugare la piastra multipozzetto bianca per 1 minuto a 1500 volte g in una centrifuga standard a secchio oscillante contenente un rotore per piastre multipozzetto con adattatori adatti. Caricare la piastra multipozzetto bianca nello strumento HRM-PCR. Avviare il programma HRM-PCR con le condizioni PCR presenti nel protocollo di testo.
Dopo la reazione HRM-PCR, eseguire l'analisi HRM per determinare il polimorfismo di lunghezza CR1, come descritto nel protocollo di testo.