Spettroscopia di fluttuazione della fluorescenza per studiare l'interazione delle proteine a contatto cellulare

0 visualizzazioni3:42 min • July 8th, 2025

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Le interazioni cellula-cellula, mediate dalle proteine sulle superfici cellulari vicine, possono essere studiate in cellule vive utilizzando un saggio di spettroscopia di fluttuazione a fluorescenza.

Innanzitutto, prendi colture cellulari separate che esprimono un recettore di adesione, una proteina transmembrana. Il recettore nelle cellule delle due popolazioni è marcato con proteine fluorescenti separate spettralmente. Queste etichette fluorescenti sono presenti sulla regione citoplasmatica del recettore, impedendo l'interferenza con l'interazione cellula-cellula.

Scartare il terreno e aggiungere la tripsina, facilitando il distacco delle cellule. Mescolare le due popolazioni cellulari e incubare, consentendo ai recettori delle cellule vicine di formare trans-interazioni omotipiche.

Posizionare le cellule sotto un microscopio confocale. Illuminare il campione utilizzando sorgenti laser di lunghezze d'onda appropriate, provocando l'emissione da entrambe le etichette fluorescenti. Localizza due celle vicine con segnali di fluorescenza di colore diverso a contatto.

Acquisisci una scansione lineare, perpendicolare alla regione delle membrane cellulari a contatto, utilizzando il canale spettrale di entrambe le etichette fluorescenti. Il laser si concentra su un piccolo volume del campione: il volume di rilevamento. Man mano che i recettori marcati con fluorescenza si diffondono dentro e fuori dal volume di rilevamento, l'intensità della fluorescenza fluttua.

Se i recettori delle cellule vicine non interagiscono, si muovono individualmente, portando a fluttuazioni indipendenti nella loro intensità di fluorescenza con una bassa correlazione incrociata.

Se le cellule vicine a contatto interagiscono attraverso i loro recettori, le proteine interagenti si diffondono insieme, causando una fluttuazione correlata nella loro intensità di fluorescenza.

Trasferire la soluzione cellulare di un pozzetto nel pozzetto corrispondente. Mescolare delicatamente pipettando alcune volte su e giù, quindi seminare le cellule miste su un piatto con fondo di vetro da 35 millilitri e coltivare le cellule seminate a 37 gradi Celsius e al 5% di anidride carbonica per un giorno.

Nel software del microscopio confocale a scansione laser, impostare il percorso ottico. Per evitare la diafonia spettrale, selezionare due tracce separate per eccitare e rilevare mEGFP o mEYFP e mCherry o mCardinal in sequenza, quindi selezionare "Cambia traccia ogni linea". Per il rilevamento, utilizzare filtri appropriati per entrambi i canali.

Posizionare la piastra contenente le celle mescolate sul supporto del campione. Dopo aver atteso 10 minuti per garantire l'equilibrio della temperatura e ridurre la deriva della messa a fuoco, mettere a fuoco le celle utilizzando la luce di trasmissione nel menu "Localizza". Cerca una coppia di celle "rosse" e "verdi" in contatto tra loro.

Quindi, selezionare un percorso di scansione perpendicolare al contatto cellula-cellula utilizzando il pulsante "Ritaglia". "Zoom" per ottenere una dimensione dei pixel da 50 a 200 nanometri e selezionare "Linea" in "Modalità di scansione". Imposta "Dimensione fotogramma" su 128 x 1 pixel. Impostare "Velocità di scansione" sul valore massimo consentito, quindi impostare i cicli da 100.000 a 500.000.

Successivamente, scegli le potenze laser appropriate. Impostare i rilevatori sulla modalità "Conteggio fotoni". Premere "Avvia esperimento" per avviare l'acquisizione.

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Ultimo aggiornamento: 15 agosto 2026