Saggio di spostamento della mobilità elettroforetica per il rilevamento di complessi fattore di trascrizione-DNA

0 views • 4:31 min • July 8th, 2025

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Le proteine regolatorie, come i fattori di trascrizione, riconoscono e si legano a specifiche sequenze di DNA nelle regioni promotrici, regolando l'espressione genica.

Per rilevare le interazioni specifiche tra fattore di trascrizione e DNA utilizzando il saggio di spostamento della mobilità elettroforetica, iniziare con una provetta contenente un fattore di trascrizione desiderato e specifiche sonde di DNA marcate con colorante fluorescente corto all'infrarosso in un tampone di legame. Incubare al buio, prevenendo il fotosbiancamento del colorante.

La forza ionica e il pH del tampone forniscono le condizioni adatte affinché il fattore di trascrizione identifichi e leghi specifiche sequenze di legame sulla sonda di DNA. Gli ioni magnesio nel tampone stabilizzano ulteriormente i complessi proteina-DNA.

Aggiungere un colorante di caricamento adatto alla miscela, aiutando a visualizzare la progressione dell'elettroforesi. Caricare questa miscela e le sonde di DNA nei pozzetti di un gel di poliacrilammide prefabbricato e non denaturante.

Eseguire l'elettroforesi al buio.

Il campo elettrico applicato fa sì che le sonde di DNA a basso peso molecolare, non legate e caricate negativamente si muovano attraverso il gel verso anodi caricati positivamente. Tuttavia, i grandi complessi proteina-sonda DNA, con un peso molecolare più elevato, migrano lentamente, portando a una migrazione ritardata e a un cambiamento nella mobilità del DNA nel gel.

Dopo l'elettroforesi, scansionare il gel utilizzando un sistema di imaging a infrarossi, visualizzando le sonde di DNA marcate con colorante fluorescente a infrarossi.

Una banda libera della sonda del DNA si trova nella parte inferiore del gel, mentre i complessi proteina-DNA appaiono come una banda spostata sul gel, indicando la formazione del complesso proteina-DNA.

Preparare 1 millilitro di tampone legante 5X mescolando Tris-HCl, cloruro di sodio, cloruro di potassio, cloruro di magnesio, EDTA, DTT, BSA e acqua a doppia distillazione.

Prima di impostare le reazioni di legame, eseguire preventivamente il gel di poliacrilammide nativo al 5% in TBE 0,5X e glicerolo al 2,5% per rimuovere tutte le tracce di persolfato di ammonio a 80 volt per 30 minuti a 1 ora o fino a quando la corrente non varia più nel tempo.

Successivamente, mescolare 4 microlitri di tampone legante 5X, da 80 a 200 nanogrammi di proteina A purificata, 1 microlitro di sonda coniugata con colorante 0,1 micromolare e acqua distillata doppia. Incubare la miscela a temperatura ambiente al buio per 15 minuti.

Dopo l'incubazione, caricare tutta la reazione di legame sul gel e far scorrere il gel a 10 volt per centimetro alla distanza desiderata. Coprire l'apparato del gel con alluminio per mantenere il gel al buio il più possibile.

Pulire il piano dello scanner di un sistema di imaging a infrarossi con acqua distillata. Asciugare le lastre di vetro contenenti il gel e posizionarle sul piano dello scanner. Apri il software di imaging a infrarossi e fai clic sulla scheda "Acquisisci".

Per le piastre più spesse, utilizzare le impostazioni di '700' per "Canale", 'Auto' per "Intensità", '84 micrometri' per "Risoluzione", 'Medio' per "Qualità" e '3,5 millimetri' per "Offset messa a fuoco". Selezionare l'area occupata dal gel sullo scanner. Infine, fai clic su "Avvia" per iniziare la scansione.

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Elettroforesi gel orizzontale per la rilevazione avanzata dei complessi proteina-RNA

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Last updated: 18 July 2026