Termoforesi su microscala per studiare le interazioni proteina-lipidi in soluzione

0 visualizzazioni3:43 min • July 8th, 2025

Per studiare l'interazione delle proteine con le molecole lipidiche, iniziare con due tubi capillari. Aggiungere proteine di prova marcate con colorante fluorescente in entrambe le provette e molecole lipidiche non marcate a una di esse. Posizionare questi capillari in un array e posizionarli all'interno di uno strumento di termoforesi su microscala.

Irradiare il capillare contenente proteine con luce infrarossa focalizzata, creando un aumento di temperatura nel punto focale che si diffonde attraverso la soluzione, generando un gradiente di temperatura all'interno di una regione ristretta contenente proteine marcate in fluorescenza.

Il rivelatore di fluorescenza raccoglie il segnale di fluorescenza dallo stesso punto del capillare, dove è focalizzato il laser. Il processore converte il segnale e genera un grafico della fluorescenza relativa in funzione del tempo.

In un gradiente di temperatura, le proteine marcate iniziano a migrare dalla regione più calda a quella più fredda, esibendo la termoforesi, un fenomeno di migrazione dipendente dalla temperatura.

A causa della termoforesi, l'intensità della fluorescenza diminuisce gradualmente nel tempo e raggiunge uno stato stazionario, in cui le proteine marcate raggiungono l'equilibrio.

Irradiare il capillare contenente la miscela proteina-lipidi, creando un gradiente di temperatura.

Durante la termoforesi, le proteine marcate in migrazione interagiscono con le molecole lipidiche, formando complessi lipidi-proteine con masse molecolari più elevate. Questo porta a un ritardo dei loro movimenti.

Questa migrazione differenziale provoca uno spostamento della fluorescenza, confermando il successo dell'interazione proteina-lipide.

Prima di iniziare un'analisi, accendere l'interruttore di alimentazione sul retro del dispositivo MST e aprire il software di controllo. Verificare che il computer sia collegato al dispositivo e in stato "Connesso" e impostare l'MST prima su 3 secondi, l'MST su 30 secondi e il recupero della fluorescenza su dopo 1 secondo.

Per ogni tubo capillare, inserire il nome del ligando target, il nome dell'analita del ligando, la concentrazione del target e la concentrazione di titolazione più alta utilizzando il rapporto di titolazione autofill. Seleziona una gamma di potenze MST e inserisci i valori per ciascuna potenza per verificare l'adattamento dell'attacco più robusto.

Per preparare campioni di MST marcati, diluire una soluzione di Vam7-ottaistidina a una concentrazione di 200 nanomolari e un colorante NTA-Atto 647 a una concentrazione di 100 nanomolari, entrambi in PBS. Miscelare la Vam7-ottaistidina e il colorante NTA-Atto 647 in rapporto volumetrico 1 a 1 e lasciare riposare la miscela a temperatura ambiente, al riparo dalla luce, per 30 minuti. Al termine dell'incubazione, centrifugare la miscela di colorante e proteine e conservare la soluzione a 4 gradi Celsius per un massimo di alcune ore prima dell'uso. Quindi, preparare il campione. Prelevare il colorante sul ligando ed esporre l'analita.

Per la termoforesi MicroScale del campione, aprire il dispositivo e far scorrere il rack capillare verso l'esterno. Caricare i capillari del campione nel rack con la concentrazione più alta in posizione 1 e selezionare il canale rosso nel software di controllo. Quindi, caricare il rack nello strumento. Quindi, selezionare un intervallo di potenza MST e avviare la misurazione Cap Scan + MST e valutare la risposta del cambio.

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Ultimo aggiornamento: 22 agosto 2026