Isolamento di monociti da sangue intero mediante selezione immunomagnetica negativa

0 visualizzazioni4:27 min • July 8th, 2025

Per isolare i monociti, un tipo di globuli bianchi, dal sangue intero mediante selezione immunomagnetica negativa, ottenere sangue umano trattato con anticoagulante in una provetta. Aggiungere una soluzione cocktail di anticorpi contenente anticorpi bloccanti il recettore Fc e complessi di anticorpi tetramerici bispecifici.

Ogni complesso anticorpale comprende due anticorpi monoclonali, di cui uno specifico per gli antigeni della superficie cellulare sulle cellule non monocitarie, compresi i globuli bianchi e rossi, e l'altro anticorpo specifico per il destrano.

Aggiungere una soluzione di microsfere magnetiche rivestite di destrano. Incubare. L'anticorpo che blocca il recettore Fc si lega al recettore Fc dei monociti, impedendo il legame non specifico degli anticorpi monoclonali.

Gli anticorpi monoclonali nei complessi anticorpali riconoscono e si legano a specifici antigeni della superficie cellulare sulle cellule non monocitarie, lasciando i monociti non marcati. Le microsfere magnetiche rivestite di destrano si legano all'anticorpo anti-destrano dei complessi anticorpali, reticolando le cellule non monocitarie alle perline.

Posizionare il tubo in un supporto magnetico. Sotto l'influenza di un campo magnetico ad alto gradiente, le cellule reticolate da perle magnetiche si legano alle pareti del tubo, lasciando i monociti al centro del tubo.

Pipettare la soluzione contenente monociti; trasferirla in una nuova provetta. Aggiungi perline magnetiche, reticolando le celle indesiderate rimanenti. Posto sotto l'influenza di un campo magnetico, arricchendo la popolazione di monociti.

Trasferire la sospensione di monociti in un tubo nuovo. Centrifugare la sospensione. Risospendere i monociti in un tampone per ulteriori analisi.

Dopo aver raccolto 40 millilitri di sangue intero umano fresco in quattro provette a vuoto EDTA da 10 millilitri, utilizzare una tecnica sterile per trasferire tutto il sangue in una singola provetta conica di propilene da 50 millilitri in una cappa di biosicurezza. Seguendo le istruzioni del produttore di un kit di isolamento dei monociti umani selezionato, aggiungere 2 millilitri di cocktail di isolamento dei monociti dal kit alla provetta di sangue e far vorticare le perle magnetiche dal kit per 30 secondi.

Aggiungere 2 millimetri di perline al sangue e utilizzare una pipetta sierologica da 25 millilitri per mescolare accuratamente le perle con il sangue. Dopo cinque minuti a temperatura ambiente, dividere equamente il sangue in quattro provette da 50 millilitri e aggiungere 30 millilitri di PBS sterile integrato con EDTA da 1 millimolare a ciascuna provetta. Mescolare nuovamente con una pipetta sierologica di plastica da 25 millilitri e posizionare le provette in supporti magnetici.

Dopo 10 minuti, utilizzare una pipetta per prelevare il contenuto dal centro di ciascuna provetta, facendo attenzione a non aspirare più di 1 millilitro di globuli rossi, e dispensare il contenuto della provetta in una delle quattro nuove provette da 50 millilitri. Aggiungere altri 500 microlitri di perle magnetiche vortex a ciascun tubo e mescolare delicatamente la soluzione cellulare. Riposizionare i tubi nei supporti magnetici per cinque minuti, prima di trasferire con cura il contenuto dal centro di ciascun tubo in uno dei quattro nuovi tubi da 50 millimetri.

Quando tutte le sospensioni cellulari sono state trasferite, posizionare ogni nuova provetta da 50 millilitri nei supporti magnetici per cinque minuti prima di trasferire con cura il contenuto della provetta in un terzo set di quattro nuove provette da 50 millilitri. Quindi, raccogliere le cellule mediante centrifugazione e risospendere tutti e quattro i pellet cellulari in un totale di 10 millilitri di PBS sterile per il conteggio.

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Ultimo aggiornamento: 22 agosto 2026