$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Specifici fattori di crescita e citochine regolano la differenziazione dei monociti, cellule del sistema immunitario innato, in macrofagi M1 pro-infiammatori o M2 anti-infiammatori.
Per studiare la differenziazione dei monociti, seminare cellule mononucleate del sangue periferico in una piastra multipozzetto di plastica contenente un terreno adatto. Incubare per consentire ai monociti di attaccarsi alla superficie della piastra mentre le cellule mononucleate non aderenti rimangono sospese. Rimuovere le celle non aderenti.
Aggiungere un terreno contenente fattore di crescita granulociti-fattore stimolante le colonie di macrofagi, GM-CSF, a una serie di pozzetti e un terreno contenente fattore stimolante le colonie di macrofagi, M-CSF, all'altro.
GM-CSF si lega al suo recettore eterodimerico sulla superficie cellulare dei monociti, portando all'espansione e alla differenziazione dei monociti in macrofagi M1-like, insieme al rilascio di citochine pro-infiammatorie.
M-CSF si lega al suo recettore omodimerico sulla superficie cellulare dei monociti, innescando la proliferazione dei monociti, la differenziazione in macrofagi M2-simili e il rilascio di citochine antinfiammatorie.
Incubare i macrofagi M1-like con lipopolisaccaride, LPS e la citochina Interferone-gamma, IFN-γ.
Il trattamento con LPS e IFN-γ produce macrofagi M1 pro-infiammatori completamente polarizzati e maturi con un maggiore rilascio di citochine pro-infiammatorie e specie reattive dell'ossigeno.
Al contrario, l'incubazione con interleuchina-4 stimola la maturazione e la polarizzazione dei macrofagi M2-like nel fenotipo M2 antinfiammatorio, insieme a una maggiore produzione di citochine antinfiammatorie.
Visualizzare i macrofagi al microscopio ottico. I macrofagi M1 appaiono allungati e allungati, mentre i macrofagi M2 mostrano una morfologia arrotondata.
Per avviare la differenziazione dei macrofagi, diluire le cellule a una concentrazione di 5 x 106 cellule per millilitro di terreno privo di siero e seminare 2 millilitri di cellule in pozzetti individuali di una piastra a 6 pozzetti. Posizionare la piastra nell'incubatore per colture cellulari per due o tre ore per consentire alle cellule di aderire al fondo del pozzetto.
Al termine dell'incubazione, lavare i pozzetti tre volte con 1 millilitro di terreno privo di siero per lavaggio e aggiungere 2 millilitri di terreno RPMI completo integrato con 50 nanogrammi per millilitro di GM-CSF, o 50 nanogrammi per millilitro di M-CSF, rispettivamente per la differenziazione M1 o M2, a ciascun pozzetto di cellule aderenti.
Tre giorni dopo l'inizio della polarizzazione, sostituire con cura 1 millilitro di surnatante da ciascun pozzetto, con 1 millilitro di terreno completo fresco integrato con i fattori di crescita appropriati.
Il sesto giorno di coltura, aggiungere 50 nanogrammi per millilitro di interferone-gamma e 10 nanogrammi per millilitro di LPS ai pozzetti trattati con GM-CSF e 20 nanogrammi per millilitro di IL4 ai pozzetti trattati con M-CSF.
Controllare regolarmente la morfologia delle colture cellulari derivate dai monociti mediante microscopia ottica per garantire che i monociti più piccoli si differenzino in cellule più grandi simili ai macrofagi.