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I megacariociti sono grandi cellule multinucleate che danno origine alle piastrine, essenziali per la coagulazione del sangue.
Per produrre piastrine in vitro, prelevare una coltura in sospensione di cellule staminali e progenitrici ematopoietiche, HSPC, derivate dal sangue del cordone ombelicale umano.
Aggiungere trombopoietina e incubare in condizioni fisiologiche. La trombopoietina si lega al suo recettore sulle HSPC, innescando eventi di segnalazione che portano alla differenziazione delle HSPC in megacariociti immaturi.
Le cellule immature subiscono un processo di maturazione per formare megacariociti maturi. Le cellule mature sono grandi e contengono granuli secretori citoplasmatici. Possiedono un nucleo poliploide multilobato e un sistema di membrane invaginate nel citoplasma.
I megacariociti maturi producono estensioni citoplasmatiche lunghe e sottili: le propiastrine. Le propiastrine, rigonfiamenti multipli delle dimensioni di una piastrina collegati da sottili ponti citoplasmatici, vengono rilasciati nel terreno.
I ponti citoplasmatici si rompono, provocando il rilascio di singole piastrine. Centrifugare per ottenere le piastrine sotto forma di pellet. Scartare il surnatante e risospendere il pellet in un tampone contenente adenosina difosfato - per l'attivazione piastrinica - e anticorpi marcati in fluorescenza - per identificare le piastrine attivate.
L'adenosina difosfato si lega a specifici recettori accoppiati a proteine G sulle piastrine. Il legame avvia una cascata di segnalazione, che porta all'attivazione piastrinica. L'attivazione induce una segnalazione intracellulare che attiva un complesso di integrine sulla membrana piastrinica. Gli anticorpi marcati in fluorescenza si legano al complesso attivato.
Analizzare le cellule utilizzando la citometria a flusso. La presenza di un segnale di fluorescenza anticorpo-specifico indica l'attivazione delle piastrine.
Per la differenziazione dei megacariociti, seminare 5 x 105 cellule CD34 positive per millilitro in 2 millilitri di terreno privo di siero, integrati con trombopoietina umana ricombinante per pozzetto, in una piastra a 12 pozzetti per la loro incubazione a 37 gradi Celsius e al 5% di anidride carbonica in un'atmosfera umidificata.
Nei punti temporali appropriati per il monitoraggio della differenziazione, raccogliere le cellule da due a tre pozzetti per punto temporale senza disturbare le cellule negli altri pozzetti e colorare le cellule raccolte con anticorpi anti-CD41 e anti-CD42a per determinare la percentuale di megacariociti maturi all'interno delle colture.
Per la visualizzazione microscopica dei marcatori della superficie cellulare, lavare le cellule raccolte in 1 millilitro di tampone di separazione e risospendere il pellet in 100 microlitri di tampone fresco. Utilizzare un citospin per seminare le cellule su un vetrino e fissare le cellule al vetrino con un'immersione di 30 secondi in metanolo. Dopo l'essiccazione all'aria, etichettare le cellule con 20 microlitri di terreno di montaggio integrato con DAPI e coprire le cellule con un vetrino coprioggetti per la visualizzazione mediante microscopia a fluorescenza.
Per contare le propiastrine, raccogliere le cellule al giorno 8 o 9 di differenziazione e seminare le cellule raccolte a 1 x 104 cellule per 200 microlitri di terreno fresco privo di siero integrato con trombopoietina umana ricombinante per pozzetto in una piastra a 48 pozzetti. Dopo 5 giorni a 37 gradi Celsius e 5% di anidride carbonica, contare il numero di megacariociti contenenti propiastrine per pozzetto su un microscopio a luce invertita utilizzando l'obiettivo 10 o 20 volte.
Per analizzare l'attivazione piastrinica, il giorno 14 o 15 di coltura, mescolare delicatamente le cellule con una pipetta Pasteur e raccogliere 100 microlitri di cellule. Aggiungere 1 millilitro di tampone di Tyrode alle celle e pellettizzarle mediante centrifugazione. Raccogliere il surnatante per la centrifugazione per pellettare le particelle delle dimensioni delle piastrine e risospendere le particelle in 100 microlitri di tampone di Tyrode fresco. Quindi, etichettare le particelle con l'anticorpo anti-PAC-1. Attivarli con adenosina difosfato per 20 minuti a temperatura ambiente e analizzare la percentuale di eventi positivi al PAC-1 mediante citometria a flusso.