Sistema di coltura timica tridimensionale per generare emigranti timici derivati da iPSC

0 visualizzazioni5:06 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Per generare emigranti timici derivati da iPSC, iTE da cellule T immature in un sistema di coltura di organi timici 3D, assumere deossiguanosina, lobi timici fetali di topo trattati con dGUO in terreni adatti.

La dGUO entra nell'ambiente timico e distrugge i linfociti timici endogeni, prevenendo la loro interferenza con le cellule T immature derivate da iPSC durante la co-coltura.

Fai un'incisione profonda al centro di ogni lobo timico. Trasferire i lobi in una piastra di coltura fresca contenente terreno integrato con i fattori di crescita, il fattore delle cellule staminali, il ligando FLT3 e l'interleuchina-7.

Pipettare il terreno contenente il lobo del timo nei pozzetti di una piastra di coltura 3D. Aggiungere cellule T immature derivate da iPSC. Incubare. Le cellule T migrano nei lobi timici attraverso l'incisione.

All'interno dell'ambiente timico, i fattori di crescita FLT3 ligando e IL-7 si legano ai rispettivi recettori sulle cellule T immature portando all'attivazione di fattori di trascrizione e all'espressione di geni specifici.

Di conseguenza, le cellule T immature subiscono una serie di cambiamenti e acquisiscono caratteristiche specifiche, maturando infine in cellule T CD8αβ+ che esprimono molecole CD8, recettori delle cellule T e molecole MHC di classe I sulla loro superficie.

Rimuovere le cellule T immature che non sono riuscite a migrare nei lobi.

Gli iTE maturi migrano fuori dai lobi timici che possono essere visualizzati come un modello simile a un alone che circonda i lobi al microscopio ottico.

Il 7° giorno di trattamento dGUO, estrai quattro nuove piastre da 10 centimetri. Riempi ogni piatto con millilitri di supporto completo. Trasferisci tutte le membrane di nitrocellulosa con i lobi timici in un piatto di 10 centimetri. Usando una pinza, staccare i singoli lobi dalla membrana, permettendo loro di essere immersi nel mezzo.

Incubare i lobi per 1 ora a temperatura ambiente. Quindi, trasferire i lobi timici in un nuovo piatto di 10 centimetri con terreno completo e incubare per 1 ora a temperatura ambiente. Ripetere il trasferimento e l'incubazione altre due volte.

Usando una pinza, fissa i lobi timici al piatto, mentre usi l'altra mano per praticare un'incisione profonda da 100 a 200 micrometri al centro ed estendendo metà del diametro del lobo per facilitare la migrazione dei progenitori delle cellule T nel lobo.

Trasferire i lobi timici in un nuovo piatto di 10 centimetri riempito con mezzi di differenziazione completi. Se si utilizzano piastre di coltura 3D con griglie di livello inferiore e superiore, riempire entrambe le griglie con PBS sterile per evitare l'evaporazione e l'essiccazione delle gocce pendenti.

Quindi, trasferire 30 microlitri di terreno completo contenente un lobo timico trattato con dGUO in ciascun pozzetto della piastra di coltura 3D. Raccogliere le cellule del lignaggio T non aderenti dalla co-coltura OP9/DLL1 e risospendere le cellule a una densità compresa tra 2.000 e 5.000 cellule del lignaggio delle cellule T per 20 microlitri di terreno. Aggiungere 20 microlitri della sospensione di cellule del lignaggio T a ciascun lobo timico nella piastra di coltura 3D. Incubare per una notte a 37 gradi Celsius con il 5% di anidride carbonica.

Il giorno successivo, impostare la pipetta P200 su 30 microlitri. Pipettare più volte il terreno in ogni pozzetto su e giù, per rimuovere tutte le cellule che circondano i lobi timici. Quindi, aspirare il terreno da ciascun pozzetto e sostituirlo con 30 microlitri di terreno completo. Ripetere questo processo (pipettaggio, rimozione e sostituzione del terreno) da 5 a 7 volte per rimuovere eventuali cellule T immature in eccesso che non migrano nei lobi.

Continuare a incubare i lobi assicurandosi di cambiare da 25 a 30 microlitri di terreno al giorno. Il giorno 4 o 5, utilizzare la microscopia ottica per confermare la formazione di un alone di immigrati timici derivati da iPSC attorno ai lobi. Raccogliete gli iTE ogni giorno pipettando i terreni senza l'interruzione dei lobi. Cambia i supporti ogni giorno e continua la raccolta fino a circa 12 giorni.

Gli iTE raccolti sono pronti per l'uso per analisi molecolari o esperimenti di trapianto in vivo.

08:02

La promozione 3-D di aggregazione delle cellule FACS purificata timica epiteliali con EAK 16-II / EAKIIH6 autoassemblanti idrogel

Video correlati

0 Visualizzazioni

13:43

Approccio in due fasi per esplorare e tardo-fasi iniziali di formazione dell'organo nel modello aviaria: il timo e le ghiandole paratiroidali organogenesi paradigma

Video correlati

0 Visualizzazioni

08:21

Inseguimento In Vivo dei timociti nell'alloggiamento anteriore dell'occhio di microscopia a scansione Laser in tempo reale

Video correlati

0 Visualizzazioni

05:47

Reaggregate Culture Thymus

Video correlati

0 Visualizzazioni

07:50

La preparazione di 2-dGuo-trattati Organ Culture Timo

Video correlati

0 Visualizzazioni

12:47

Differenziazione Regia di cellule staminali pluripotenti indotte verso Linfociti T

Video correlati

0 Visualizzazioni

08:27

Derivazione di cellule T In Vitro Da cellule staminali embrionali di topo

Video correlati

0 Visualizzazioni

06:47

3D organotipica Co-cultura Modello Sostenere midollare timica epiteliale proliferazione, differenziazione e promiscua genica

Video correlati

0 Visualizzazioni

05:47

Isolamento e Trapianto di diversi invecchiato murini del timo innesti.

Video correlati

0 Visualizzazioni

08:56

Caratterizzazione di timica assestamento Progenitori nell'embrione mouse Uso In Vivo E In Vitro Saggi

Video correlati

0 Visualizzazioni

Ultimo aggiornamento: 15 agosto 2026