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Le cellule immunitarie comunicano tra loro attraverso l'interazione di più recettori, formando una giunzione specializzata, una sinapsi immunologica. Questa sinapsi funge da sito per lo scambio di molecole di segnalazione essenziali per una risposta immunitaria.
Per studiare la formazione di sinapsi immunologiche in vitro, iniziare con un vetrino a micropozzetti rivestito di matrice basale contenente una coltura aderente di cellule presentanti l'antigene umano attivate, APC.
Le APC attivate presentano antigeni legati al complesso maggiore di istocompatibilità o molecole MHC-II sulla loro superficie, essenziali per l'attivazione delle cellule T. Queste cellule sono etichettate con un colorante fluorescente blu per una facile identificazione.
Trattare i pozzetti con linfociti T helper umani ricombinanti. Questi linfociti T helper esprimono proteine di membrana colorate con proteine fluorescenti verdi, CD63, presenti nelle vescicole secretorie. Ciò consente il tracciamento delle vescicole secretorie.
I recettori delle cellule T dei linfociti interagiscono con i complessi MHC-antigene sulle APC, portando i linfociti T helper vicino alle cellule presentanti l'antigene, con conseguente coniugazione.
Dopo la coniugazione, le molecole di segnalazione co-stimolatorie sulle APC interagiscono con i recettori dei linfociti, formando un cluster attorno al sito di coniugazione, creando una sinapsi immunologica.
La formazione di sinapsi innesca la riorganizzazione del citoscheletro dei linfociti, che comporta il riposizionamento degli elementi del citoscheletro, filamenti di actina e microtubuli. Questa riorganizzazione facilita il movimento delle vescicole verso la sinapsi vicino alle APC.
Osservare le cellule al microscopio a fluorescenza. Registrare il movimento delle vescicole verdi all'interno della cellula T helper verso le APC blu, confermando la formazione di sinapsi immunologiche.
Recuperare dall'incubatore i vetrini della camera contenenti le cellule Raji aderenti allo Staphylococcus Enterotossina E-pulsate con etichetta blu del tracker cellulare. Aspirare con cura il terreno di coltura da ciascun pozzetto, uno per uno, con una pipetta posta in un angolo del pozzetto.
Sostituire immediatamente il terreno con 200 microlitri di cellule Jurkat risospese nel terreno di coltura cellulare. Se viene eseguito un time-lapse, procedere rapidamente al microscopio.
Individuare il vetrino della camera sull'incubatore del tavolino del microscopio e selezionare alcuni campi appropriati.
Preparare il microscopio nella camera di incubazione prima dell'imaging. Dopo che le cellule Jurkat sono state aggiunte a ciascun pozzetto contenente le cellule Raji, individuare rapidamente il vetrino della camera a micropozzetti sull'incubatore del tavolino del microscopio preriscaldato e selezionare alcune posizioni XY.
Se è previsto solo un esperimento finale, incubare il vetrino della camera a 37 gradi Celsius con il 5% di anidride carbonica per 1 o 2 ore. Dopo il periodo di coltura, verificare la formazione di coniugati e successivamente fissare i coniugati, come indicato nel protocollo di testo.