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Macerare la milza e i linfonodi di topo su un colino cellulare. Sciacquare il colino con un tampone adatto per raccogliere splenociti e linfociti.
Incubare le cellule con un cocktail di anticorpi biotinilati e microsfere magnetiche anti-biotina che si legano alle cellule non CD8+.
Far passare la sospensione cellulare attraverso una colonna magnetica. A causa della forza magnetica, le cellule non-CD8+ legate a perline si legano alla parete della colonna mentre le cellule T CD8+ eluscono.
Incubare le cellule eluite con cellule artificiali presentanti l'antigene, aAPC. Si tratta di nanoparticelle magnetiche funzionalizzate con la proteina di fusione del complesso maggiore di istocompatibilità-immunoglobulina caricata con antigene, MHC-Ig e anticorpo anti-CD28.
Le MHC-Ig caricate con l'antigene si legano a recettori distinti sulle cellule T CD8+ antigene-specifiche. Gli anticorpi anti-CD28 interagiscono con i recettori CD28 delle cellule T, avviando l'attivazione delle cellule T.
Posizionare il tubo contenente nanoparticelle magnetiche e miscela di cellule su un supporto magnetico. Le cellule T CD8+ legate ad aAPC vengono attratte dal campo magnetico, mentre le cellule T CD8+ non specifiche rimangono sospese. Rimuovere il surnatante.
Rimuovere il tubo dal supporto magnetico. Risospendere le cellule legate all'aAPC in terreni contenenti il fattore di crescita delle cellule T. Seminali in una piastra a più pozzetti.
I fattori di crescita inducono l'espansione delle cellule T CD8+ antigene-specifiche.
Per isolare le cellule T CD8-positive antigene-specifiche, macerare la milza e i linfonodi da topi C57Black/6j wild-type attraverso un colino cellulare sterile da 70 micrometri con frequenti risciacqui PBS e utilizzare un kit di isolamento delle cellule T CD8-positive no-touch, secondo le istruzioni del produttore, per eliminare le cellule T non CD8-positive.
Dopo il conteggio, raccogliere le cellule T CD8-positive isolate mediante centrifugazione e risospendere il pellet in 100 microlitri di PBS, integrato con albumina sierica bovina allo 0,5% e EDTA da 2 millimolari.
Quindi, incubare le cellule con le cellule presentanti l'antigene artificiale con nanoparticelle in modo tale che ci siano 1 x 1011 MHC-Ig caricate con peptidi, per 1 x 106 cellule T CD8-positive isolate in una provetta sterile di polistirene da 5 millilitri a fondo tondo per 1 ora a 4 gradi Celsius con miscelazione continua.
Al termine dell'incubazione, lavare la sospensione cellulare di nanoparticelle tre volte sul supporto magnetico come dimostrato, ri-sospendendo le cellule artificiali presentanti l'antigene e le cellule T CD8-positive arricchite in 500 microlitri di terreno fresco integrato con fattore di crescita delle cellule T all'1%, dopo l'ultimo lavaggio.
Per il massimo recupero cellulare, è fondamentale lasciare le particelle nelle celle sulla colonna magnetica per almeno 2 minuti e aspirare accuratamente il tampone senza distruggere le particelle e le celle soggette al campo magnetico.
Dopo il conteggio, seminare 2,5 x 105 cellule T CD8-positive arricchite e una miscela di particelle magnetiche per 160 microlitri di terreno integrato più l'1% di TCGF in una piastra con fondo a U a 96 pozzetti. Il terzo giorno, nutrire le cellule con 80 microlitri di terreno integrato con fattore di crescita delle cellule T al 2% per pozzetto e rimettere la piastra nell'incubatore di coltura cellulare per altri quattro giorni.
Il settimo giorno, raccogliere le cellule stimolate in una provetta a fondo tondo da 5 millilitri per il conteggio e raccogliere le cellule mediante centrifugazione. Risospendere il pellet in 0,5 millilitri di PBS integrato con azoturo di sodio allo 0,05% e siero bovino fetale al 2% per il conteggio e aliquotare da 5 x 104 a 5 x 105 cellule in nuove provette a fondo tondo da 5 millilitri per la colorazione antigene-specifica.
Etichettare le provette appropriate con MHC-Ig biotinilato e CD8a anti-topo per 1 ora a 4 gradi Celsius, seguito da un lavaggio centrifugato in PBS fresco, per rimuovere l'eccesso di immunoglobuline biotinilate. Quindi, colorare i campioni con un anticorpo secondario coniugato con streptavidina appropriata e un'appropriata colorazione di cellule morte riparabili vive/morte per 15 minuti a 4 gradi Celsius e leggere le cellule su un citometro a flusso per determinare la specificità e il numero di cellule T CD8-positive antigene-specifiche, secondo i protocolli standard.