Separazione dei neutrofili senza marcatura dalla secrezione tracheale mediante canale microfluidico a spirale

0 visualizzazioni3:51 min • July 8th, 2025

I neutrofili, cellule immunitarie con nuclei multilobati, regolano l'immunità tracheale inghiottendo i patogeni invasori.

Per separare i neutrofili dalla secrezione tracheale, iniziare con un canale microfluidico a spirale.

Il canale a spirale ha origine dall'ingresso centrale, estendendosi e biforcandosi progressivamente in bocchette interne ed esterne della parete. Il canale di biforcazione ha spessori variabili, garantendo una separazione efficiente. Ogni canale curvo assomiglia a un trapezio, con l'altezza della parete esterna maggiore di quella della parete interna, generando un modello di flusso variabile.

Riempire l'ingresso con una secrezione tracheale umana prefiltrata e diluita comprendente aggregati di mucina, neutrofili ed eritrociti, come contaminanti incidentali. Far fluire il campione a una velocità di flusso specifica attraverso il microcanale a spirale che porta alla dispersione delle cellule e degli aggregati.

Mentre le cellule viaggiano attraverso il canale trapezoidale, subiscono la resistenza di Dean e le forze di sollevamento inerziale. L'interazione tra queste due forze crea un equilibrio, separando le cellule in base alle loro dimensioni. Di conseguenza, i neutrofili di dimensioni maggiori si accumulano vicino alla parete interna del canale, mentre gli eritrociti e gli aggregati di mucina rimangono vicino alla parete esterna del canale.

Infine, i neutrofili si muovono attraverso il canale più ampio e vengono raccolti nello sbocco della parete interna.

Al contrario, il canale stretto raccoglie eritrociti e aggregati di mucina nello sbocco della parete esterna, garantendo un'efficiente separazione dei neutrofili.

Utilizzare una siringa da 10 millilitri per raccogliere 1 millilitro di campioni di secrezione delle vie aeree in 9 millilitri di soluzione salina tamponata con fosfato. Quindi, con l'aiuto di una pipetta smussata, omogeneizzare il campione di muco. Quindi, utilizzare un colino cellulare in nylon da 40 micrometri per filtrare il diluente e rimuovere grandi pezzi di tessuto o coaguli di sangue. Al termine del filtraggio, mettere il campione sul ghiaccio.

Quindi, aggiungere 50 millilitri di soluzione salina tamponata con fosfato al diluente del campione da 0,5 millilitri per ottenere una concentrazione finale di 1.000 volte il campione diluito. Utilizzare la guida del fluido per assemblare il chip PDMS al fine di applicare un flusso uniforme a ciascuno dei quattro microcanali a spirale. Quindi, utilizzare un connettore luer maschio con diametro di 1/16 di pollice per il collegamento all'ingresso, all'uscita a parete interna e alle porte di uscita a parete esterna della guida del fluido.

Quindi, collegare un tubo di silicone alla sospensione del campione. Quindi, collegare la pompa peristaltica al tubo di ingresso. Posizionare il tubo di uscita della parete esterna nel serbatoio di scarico. Quindi posizionare l'estremità del tubo di ingresso e il tubo di uscita della parete interna nel serbatoio del campione.

Dopo aver posizionato il tubo, lasciare una provetta da 50 millilitri riempita con 5 millilitri di soluzione salina tamponata con fosfato senza calcio e magnesio nel serbatoio del campione. Quindi, per adescare il dispositivo, iniziare a pompare a una portata di circa 1 millilitro al minuto.

Dopo aver posizionato il campione nel serbatoio, accendere la pompa peristaltica e impostare la portata a 4 millilitri al minuto. Dopo che il volume del campione ha raggiunto il volume desiderato di circa 1-2 millilitri, interrompere l'operazione e scollegare il tubo.

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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026