Un test per studiare il ruolo della vitronectina nell'aderenza batterica alle cellule epiteliali dell'ospite

0 visualizzazioni3:53 min • July 8th, 2025

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Prelevare una piastra a più pozzetti contenente monostrati di cellule epiteliali aderenti. Sostituire i terreni con terreni privi di siero, prevenendo l'interferenza delle proteine sieriche. Dopo l'incubazione, rimuovere il terreno. Lavare le celle con tampone. Aggiungere terreni freddi senza siero contenenti vitronectina. Incubare a temperature più basse.

Il dominio RGD N-terminale della vitronectina si lega ai recettori delle integrine della superficie delle cellule epiteliali. Temperature più basse inibiscono l'internalizzazione cellulare del complesso vitronectina-integrina.

Dopo la saturazione del recettore delle integrine, rimuovere il terreno. Lavare con tampone per rimuovere l'eccesso di vitronectina, che potrebbe influire sul legame batterico dell'integrina vitronectina-dipendente.

Aggiungere Haemophilus influenzae tipo f, o Hif, un patogeno batterico gram-negativo, sospensione. Incubare.

La proteina H sulla superficie di Hif si lega al C-terminale della vitronectina, facilitando l'adesione di Hif alla cellula epiteliale e la successiva internalizzazione.

Rimuovere il supporto e lavare con tampone per rimuovere l'Hif non legato. Utilizzare un enzima di distacco cellulare per raccogliere le cellule. Aggiungere terreni contenenti siero per fermare la reazione enzimatica. Trasferire la sospensione cellulare in un tubo di vetro contenente perle di vetro. Vortice per lisare le cellule, rilasciando batteri internalizzati e attaccati alla superficie.

Diluire il lisato con un terreno privo di siero e semi su una piastra di agar di cioccolato. Incubare per Hif per formare colonie. Conta le colonie.

Un numero maggiore di colonie indica una maggiore aderenza di Hif alle cellule epiteliali in presenza di vitronectina.

Coltura di cellule epiteliali A549 come descritto nel protocollo di testo. Dopo un lavaggio e la tripsinizzazione delle cellule a 37 gradi Celsius, diluire la sospensione cellulare a 5.000 cellule per millilitro utilizzando un terreno completo contenente 5 microgrammi per millilitro di gentamicina.

Prima dell'infezione batterica, sostituire il terreno nei pozzetti con terreno F12 e incubare per una notte a 37 gradi Celsius. Lavare tre volte il monostrato di celle con 1 millilitro di PBS a temperatura ambiente. Quindi, posizionare il piatto sul ghiaccio e aggiungere 200 microlitri di terreno F12 pre-raffreddato, contenente 10 microgrammi per millilitro di vitronectina.

Dopo aver incubato la piastra a 4 gradi Celsius per 1 ora, scartare la soluzione mediante pipettaggio e lavare lo strato cellulare due volte con 1 millilitro di PBS a temperatura ambiente. Aggiungere 100 microlitri di Hif wild-type appena coltivato in terreno F12 a ciascun pozzetto. Incubare la piastra per 2 ore a 37 gradi Celsius. Quindi aspirare il terreno con una pipetta e lavare le cellule epiteliali A549 tre volte con PBS a 50 microlitri per pozzetto di soluzione di distacco cellulare e seguire con un'incubazione di 5 minuti a 37 gradi Celsius.

Quindi, aggiungere 50 microlitri di terreno completo F12 per pozzetto per fermare la reazione enzimatica. Trasferire le cellule epiteliali da ciascun pozzetto in una provetta di vetro da 6 millilitri contenente 4 perle di vetro. Liare le cellule a temperatura ambiente agitando per 2 minuti.

Dopo aver diluito il lisato cellulare 100 volte, impiattare 10 microlitri del campione diluito su una piastra di agar di cioccolato. Conta le colonie dopo un'incubazione notturna a 37 gradi Celsius.

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Ultimo aggiornamento: 22 agosto 2026