Microscopia intravitale per analizzare le interazioni tra cellule del sangue ed endoteliali in un modello murino di infiammazione

0 visualizzazioni4:45 min • July 8th, 2025

Inizia con un topo anestetizzato a cui è stato iniettato per via intraperitoneale un lipopolisaccaride per indurre l'infiammazione.

Incidere l'addome per esporre la cavità addominale. Mantenere l'idratazione degli organi con soluzione fisiologica. Iniettare rodamina 6G per via retroorbitale. Le molecole di colorante fluorescente entrano in circolo ed etichettano leucociti e piastrine per la loro visualizzazione.

Ora, esteriorizza un anello di ileo con i suoi vasi mesenterari. Mantieni il tessuto idratato con soluzione fisiologica preriscaldata per un imaging ottimale. Sotto un microscopio a fluorescenza, mettere a fuoco una vena mesentere per la microscopia intravitale.

L'iniezione di lipopolisaccaridi provoca l'attivazione delle cellule endoteliali con l'upregolazione delle molecole di adesione, comprese le selectine. Le piastrine circolanti vengono reclutate nell'endotelio, dove si legano attraverso specifiche interazioni molecola di adesione-ligando, formando complessi di adesione.

A causa di queste interazioni, le piastrine si attivano e rilasciano granuli contenenti molecole, tra cui la serotonina, promuovendo il reclutamento dei leucociti.

I leucociti si spostano sulla superficie endoteliale e si legano alle piastrine attivate. Inoltre, i leucociti rotolano lungo l'endotelio e si legano alle cellule endoteliali attraverso deboli interazioni adesive. Il movimento rotatorio attiva le integrine leucocitarie per una solida adesione alle cellule endoteliali, cruciale per la trasmigrazione leucocitaria-endoteliale.

Utilizzando la microscopia intravitale, è possibile visualizzare i leucociti e le piastrine fluorescenti per determinare le loro interazioni in tempo reale con le cellule endoteliali.

Quattro ore prima dell'imaging intravitale, iniettare 20 milligrammi per chilogrammo di LPS IP in un topo maschio di 16-20 grammi di 4-6 settimane per indurre la finta risposta infiammatoria batterica.

Preriscaldare una soluzione salina allo 0,9% in un bagno d'acqua a 37 gradi Celsius per umidificare anche la camera di plastica e il tessuto mesenterario. Successivamente, confermare la profondità appropriata dell'anestesia in base alla mancanza di risposta al pizzicamento delle dita dei piedi nel topo trattato con LPS, quindi applicare l'unguento sugli occhi dell'animale.

Depilare l'addome con un rasoio, rimuovendo i peli sciolti con una garza imbevuta di etanolo al 70%. Quindi, usa una piccola pinza curva e le forbici per aprire l'addome.

Identificare i vasi epigastrici e aprire il peritoneo nella regione della linea alba per proteggere i vasi. Applicare alcune gocce di soluzione salina preriscaldata nella cavità addominale per mantenere umido il tessuto, seguita da un'iniezione retro-orbitale di 50 microlitri di rodamina 6G per etichettare le cellule del sangue circolanti. Quindi, posizionare il topo in una capsula di Petri di 10 centimetri, esteriorizzare un anello di ileo e somministrare la soluzione salina preriscaldata ogni due minuti per mantenere umido il tessuto.

Per visualizzare la risposta infiammatoria mediante microscopia intravitale, posizionare il topo sotto il microscopio e portare nel campo visivo una vena mesentere con un diametro compreso tra 200 e 300 micrometri e il meno possibile visibile di grasso circostante

.

Utilizzando il software del microscopio appropriato, registrare le interazioni tra cellule del sangue ed endoteliali per 1 minuto in 4 diverse vene per topo. Quindi, per analizzare le risposte da cellula a cellula, confermare le condizioni di flusso sanguigno stabili e interindividuali.

Per quantificare il numero di leucociti che rotolano, traccia una linea verticale attraverso la vena e conta manualmente tutti i leucociti che attraversano questa linea in 1 minuto. Per determinare la velocità di rotolamento, tracciare due linee verticali attraverso la vena a 50 micrometri di distanza e misurare il tempo impiegato da un singolo leucocita per attraversare le linee mentre rotola stabilmente sull'endotelio.

Per misurare l'adesione dei leucociti, disegnare un quadrato di 200 x 200 micrometri nella vena. Quindi contare manualmente i leucociti saldamente aderenti che non mostrano alcun movimento visibile all'interno del quadrato per 30 secondi. Infine, per quantificare le interazioni piastrine-leucociti, contare manualmente il numero di piastrine legate a un leucocita.

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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026