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Iniziare con una coltura scongelata di Mycobacterium bovis BCG lux, un ceppo bioluminescente geneticamente modificato di Mycobacterium bovis attenuato che esprime l'enzima luciferasi reporter.
Inoculare la sospensione in un pallone di coltura contenente il terreno di coltura antibiotico integrato con igromicina. Incubare. BCG lux ospita il gene resistente all'igromicina, facilitandone la sopravvivenza e la crescita.
Dopo l'incubazione, preparare le diluizioni di coltura appropriate utilizzando un tampone in provette luminometriche. Trasferire sul luminometro, caricato con una soluzione di substrato di aldeide alifatica a catena lunga. Durante la corsa, l'aldeide viene iniettata nella sospensione micobatterica che entra nelle cellule.
La luciferasi batterica catalizza l'ossidazione del mononucleotide endogeno ridotto di flavina e dell'aldeide, con conseguente emissione di luce blu-verde. L'intensità di bioluminescenza misurata indica l'attività metabolica del flusso BCG ed è correlata alla misura dei batteri vitali o delle unità formanti colonie, CFU.
Quindi, centrifugare la coltura micobatterica rimanente. Risospendere il pellet micobatterico in un tampone contenente un tensioattivo non ionico per prevenire l'aggregazione di micobatteri
.
Utilizzando le misure di bioluminescenza, diluire la sospensione per ottenere la densità cellulare desiderata. Preparare diluizioni seriali di micobatteri e piastrerli su piastre di agar nutriente integrate con igromicina. Incubare, permettendo a BCG lux di formare colonie.
Calcolare i CFU per confermare la correlazione con l'intensità della bioluminescenza. L'inoculo BCG lux preparato può essere utilizzato per studi sulle infezioni.
Per iniziare, scongelare una scorta di glicerolo congelata da 1,2 millilitri di Mycobacterium bovis BCG lux. Il ceppo vaccinale di Montreal si è trasformato con il plasmide navetta PSMT-1 che trasporta i geni luxAB. In un pallone di Erlenmeyer da 250 millilitri etichettato, inoculare 15 millilitri di brodo Middlebrook 7H9 con l'aliquota scongelata da 1,2 millilitri di BCG lux.
Posizionare il pallone in un contenitore sigillato di biosicurezza e incubare a 37 gradi Celsius in un incubatore con agitatore orbitale a 220 giri/min per 72 ore. Dopo l'incubazione, preparare da una a 10 diluizioni della coltura in soluzione salina tamponata con fosfato in provette luminometriche. Vortex e caricare i tubi del luminometro nel luminometro.
Caricare l'aldeide n-decil-1% del substrato in etanolo assoluto nella piattaforma dell'iniettore e misurare la bioluminescenza. Converti la bioluminescenza in unità formanti colonie per controllare la crescita della coltura lux BCG.
Trasferire la coltura in una provetta da centrifuga e centrifugare a 2.175 volte g per 10 minuti a temperatura ambiente per pellettare le cellule. Eliminare il surnatante in un disinfettante appropriato con attività micobattericida nota. Lavare due volte il pellet cellulare in 50 millilitri di PBS-T centrifugando a 2.175 volte g per 10 minuti per evitare la formazione di aggregazione batterica.
Dopo il lavaggio finale, decantare il surnatante di scarto e risospendere il pellet di cellule micobatteriche nel volume richiesto di PBS-T per diluire la sospensione micobatterica alla densità cellulare desiderata. Quindi, preparare diluizioni seriali di 10 volte dell'inoculo in piastre a 24 pozzetti utilizzando PBS-T.
Prelevare 10 microlitri di ciascuna diluizione su piastre di agar Middlebrook 7H11 in duplicato per enumerare la conta delle CFU dell'inoculo.