Induzione della malattia del trapianto contro l'ospite in modelli murini tramite trapianto allogenico di midollo osseo e cellule spleniche

0 visualizzazioni5:54 min • July 8th, 2025

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Inizia con un topo ricevente anestetizzato precedentemente irradiato per sopprimere il sistema immunitario dell'ospite.

Ottenere cellule staminali ematopoietiche da un topo donatore geneticamente diverso per imitare il trapianto di cellule staminali allogeniche.

Rimuovere le cellule T del donatore utilizzando perline magnetiche.

Iniettare questa sospensione impoverita di cellule T nello spazio retrobulbare del topo ricevente.

Le cellule trapiantate entrano nel flusso sanguigno, migrano verso i vasi del midollo osseo e utilizzano molecole di adesione per entrare nella nicchia, avviando l'emopoiesi.

Iniettare linfociti T splenici da un topo donatore allogenico nello spazio retrobulbare del ricevente per indurre la cross-reattività immunitaria.

Queste cellule T alloreattive migrano in vari tessuti.

I recettori di superficie delle cellule T si legano agli antigeni delle cellule riceventi, riconoscendoli come estranei.

Questo innesca una cascata di eventi di segnalazione all'interno dei linfociti T, portando alla loro attivazione.

Le cellule T attivate innescano una cascata infiammatoria caratterizzata dal reclutamento di ulteriori cellule immunitarie che danneggiano collettivamente i tessuti dell'ospite, portando allo sviluppo della malattia del trapianto contro l'ospite.

Un giorno dopo l'irradiazione total body dei topi BALB/c riceventi, posizionare un CD45.1/Ly5.1 B6. Il topo donatore SJL in posizione prona su una guaina funzionante pulita e utilizzare una punta curva e seghettata di 13 centimetri di una pinza Semken per sollevare la pelliccia su un tallone d'Achille.

Usando forbici sottili indurite da 8,5 centimetri con punte dritte, incidi la pelle tra la pinza e un tallone, allungando l'incisione cranialmente per facilitare la rimozione della pelle e del pelo dagli arti posteriori. Quando la pelle è stata rimossa dagli arti posteriori, tagliare ciascuna articolazione dell'anca, della caviglia e del ginocchio.

Conservare la coscia e lo stinco di ogni arto posteriore in un'unica capsula di Petri da 92 millimetri riempita di PBS su ghiaccio e rimuovere con cura quanto più muscolo possibile da ogni osso, trasferendo ogni femore e tibia puliti in un tubo da 50 millilitri di terreno sterile RPMI 1640 su ghiaccio umido.

Per isolare il midollo osseo, trasferire un osso alla volta in una nuova piastra di Petri da 92 millimetri riempita con terreno RPMI 1640 fresco e utilizzare un bisturi per tagliare le estremità di ciascun osso. Successivamente, utilizzare una siringa da 1 millilitro dotata di un ago calibro 26 per lavare le ossa con un millilitro di terreno fresco alla volta in una provetta di raccolta da 50 millilitri contenente cinque millilitri di terreno.

Quando tutte le ossa sono state lavate, pipettare delicatamente i pezzi friabili di midollo osseo su e giù più volte per generare una sospensione a cellula singola. Prima di filtrare le cellule attraverso un filtro a rete da 40 micrometri in una nuova provetta di raccolta da 50 millilitri, pellettare le cellule mediante centrifugazione e risospendere le cellule in cinque millilitri di tampone di lisi di potassio cloruro di ammonio per un'incubazione di tre minuti a temperatura ambiente. Al termine dell'incubazione, interrompere la reazione con 10 millilitri di PBS e centrifugare nuovamente le cellule.

Risospendere il pellet in due millilitri di PBS fresco per il conteggio e mettere da parte un'aliquota di 6 x 106 cellule per l'analisi citofluorimetrica a valle. Successivamente, utilizzare un kit di purificazione cellulare disponibile in commercio per esaurire magneticamente le cellule T CD90.2-positive dalla sospensione a singola cellula del midollo osseo secondo le istruzioni del produttore e mettere da parte un'aliquota di1 x 10 6 cellule dell'eluato impoverito delle cellule T per l'analisi citofluorimetrica a valle della purezza e della composizione cellulare prima e dopo la separazione.

Quindi, utilizzare una siringa da un millilitro dotata di un ago calibro 30 per iniettare 5 x 10 cellule del midollo osseo impoverite dicellule T e 100 microlitri di PBS per via endovenosa nello spazio retrobulbare del seno venoso di ciascun animale ricevente irradiato.

Il giorno successivo, posizionare una milza prelevata da un animale donatore su un colino a rete da 40 micrometri in una provetta di raccolta da 50 millilitri e utilizzare uno stantuffo a siringa per premere il tessuto della milza attraverso il colino nel tubo. Lavare il colino e lo stantuffo con PBS per raccogliere tutti gli splenociti e pellettare le cellule mediante centrifugazione, dopo la lisi dei globuli rossi, come dimostrato. Risospendere i globuli bianchi per il conteggio e mettere da parte un'aliquota di 6 x 106 cellule per l'analisi citofluorimetrica a valle.

Per un isolamento totale delle cellule T CD3-positive dagli splenociti totali, utilizzare un kit di purificazione cellulare disponibile in commercio secondo le istruzioni del produttore e mettere da parte un'aliquota di 1 x 106 cellule T CD3-positive dalla frazione cellulare positiva per l'analisi citofluorimetrica a valle della purezza e della composizione cellulare, prima e dopo la separazione. Quindi, iniettare 7 x 10,5 cellule T CD3-positive alloreattive e 100 microlitri di PBS per via endovenosa nello spazio retrobulbare di ciascun topo ricevente per indurre la GvHD.

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Ultimo aggiornamento: 1 agosto 2026