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Durante l'infezione, i macrofagi alveolari rilasciano trappole extracellulari per macrofagi o MET per eliminare gli agenti patogeni.
I MET sono costituiti da fibre di cromatina complessate con peptidil arginina deiminasi, PAD, metalloproteinasi della matrice e istoni citrullinati.
Per visualizzare i MET nei macrofagi dal liquido di lavaggio broncoalveolare, centrifugare prima il fluido.
Piastra le celle risospese su vetrini coprioggetti all'interno di pozzetti a piastre multipozzetto.
I macrofagi si attaccano ai vetrini, mentre altre cellule rimangono sospese e vengono scartate.
Fissare i macrofagi, preservando la struttura cellulare. Permeabilizzarli per accedere ai bersagli cellulari.
Aggiungere proteine bloccanti, impedendo il legame di anticorpi non specifici.
Integrare con un cocktail di anticorpi primari che si lega rispettivamente agli istoni citrullinati, ai PAD e alle metalloproteinasi della matrice.
Aggiungere diversi anticorpi secondari marcati con fluorofori che si legano agli anticorpi primari bersaglio legati alla proteina MET.
Montare le celle con un mezzo di montaggio contenente DAPI. Il DAPI, un colorante fluorescente, colora le fibre di cromatina.
Utilizzando un microscopio confocale, visualizzare i MET caratterizzati da fibre di cromatina extracellulare fluorescenti con istoni citrullinati, PAD e metalloproteinasi.
Dopo aver ottenuto macrofagi polmonari da esseri umani e topi mediante lavaggio broncoalveolare, o BAL, secondo il protocollo di testo, utilizzare il blu di tripano e un emocitometro per eseguire una conta cellulare vitale sulla soluzione BAL. Pipettare da 1 a 4 x 105 macrofagi in 500 microlitri di terreno di coltura su vetrini coprioggetti nei pozzetti delle piastre a 24 pozzetti. Quindi, incubare le cellule a 37 gradi Celsius durante la notte affinché le cellule aderiscano.
Rimuovere il terreno di coltura e utilizzare il PBS per lavare le cellule una volta. Quindi, aggiungere il 2% di paraformaldeide/periodato/lisina o fissativo PLP e incubare i campioni per 10 minuti. Dopo aver usato il PBS per lavare brevemente le cellule, aggiungere lo 0,2% di Tween-20 in PBS e incubare le cellule per 20 minuti.
Successivamente, per bloccare le cellule, aggiungere il 10% di siero di pollo in BSA al 5% diluito in PBS e incubare i campioni a temperatura ambiente per 30 minuti. Quindi, sostituire la soluzione in blocchi con una concentrazione da 1 a 100 di anticorpi primari e di controllo isotopico e incubare le cellule a temperatura ambiente per un'ora. Dopo l'incubazione, utilizzare il PBS per lavare le cellule prima di aggiungere gli anticorpi secondari corrispondenti. Quindi, incubare i campioni per 40 minuti a temperatura ambiente.
Dopo aver lavato le celle in PBS, montare i campioni con un mezzo di montaggio basato su DAPI. Quindi, visualizzare i campioni utilizzando un microscopio confocale.