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Assumere gli splenociti impoveriti di globuli rossi in un tampone contenente un colorante fluorescente sensibile al calcio performato nelle cellule, l'Indo-1 AM.
Le esterasi intracellulari scindono l'Indo-1 AM in Indo-1 impermeabile alla membrana, che si lega agli ioni calcio, cambiando il segnale di fluorescenza dell'Indo-1 dal blu al viola.
Introdurre anticorpi antigene-specifici coniugati con fluorofori che si legano specificamente ai rispettivi antigeni sulle cellule.
Utilizzando la citometria a flusso, identificare le cellule B marcate con fluorofori e misurare il loro rapporto di fluorescenza viola-blu Indo-1.
Ora, trattare le cellule con liposomi antigenici che comprendono frammenti di IgM Fab coniugati a doppi strati liposomiali.
I recettori delle cellule B si legano agli antigeni accoppiati ai liposomi, attivando le tirosin-chinasi citoplasmatiche associate e innescando l'attivazione della fosfolipasi-C gamma-2.
La fosfolipasi-C attivata scinde il fosfolipide di membrana, il fosfatidilinositolo 4,5-bisfosfato, generando secondi messaggeri, tra cui l'inositolo 1,4,5-trisfosfato o IP3.
IP3 si lega ai canali del calcio IP3-dipendenti sul reticolo endoplasmatico, rilasciando ioni calcio nel citoplasma.
Questi ioni calcio legano le molecole Indo-1 non legate, aumentando la fluorescenza viola.
Un rapporto di fluorescenza viola-blu indo-1 più elevato nelle cellule B marcate conferma la loro attivazione da parte dei liposomi antigenici.
Per monitorare la risposta delle cellule B all'attivazione dei liposomi antigenici, risospendere 1,5 x 107 splenociti in un tampone di carico del flusso di calcio e aggiungere 1,5 micromolari di Indo-1 alle cellule, capovolgendo più volte la soluzione nel tubo per mescolare. Dopo un'incubazione a bagno d'acqua di 30 minuti a 37 gradi Celsius al riparo dalla luce, aggiungere 5 volte il volume del tampone di caricamento del flusso di calcio e centrifugare le cellule marcate con Indo-1.
Per il gating delle cellule B, colorare le cellule con anticorpi anti-CD5 e anti-B220 in 0,5 millilitri di tampone di carico a 4 gradi Celsius per 20 minuti al riparo dalla luce. Al termine dell'incubazione, lavare le cellule in tampone di carico del flusso di calcio fresco e risospendere il pellet a 1 o 2 x 107 cellule per millilitro di tampone di flusso di calcio fresco per la conservazione su ghiaccio al riparo dalla luce, fino all'analisi.
Quindi, aggiungi 0,5 millilitri di cellule a un tubo di polistirene a fondo tondo da 5 millilitri con tappo e riscalda le celle a 37 gradi Celsius a bagnomaria. Dopo 3-5 minuti, trasferire la provetta in una camera con camicia d'acqua a 37 gradi Celsius collegata a un bagno d'acqua a ricircolo e far scorrere la provetta nella camicia d'acqua del citometro a flusso.
Dopo aver raccolto da 5.000 a 10.000 eventi al secondo, lasciare che le celle si stabilizzino per 15-30 secondi e riavviare l'acquisizione dei dati, raccogliendo i dati per almeno 10 secondi per stabilire una lettura di fondo. Al segno dei 10 secondi, rimuovere rapidamente la provetta dal citometro a flusso e aggiungere la concentrazione sperimentale appropriata di liposomi antigenici. Quindi, pulsare le cellule e leggere la provetta sul citometro per altri 3-5 minuti.