JoVE Encyclopedia of Experiments
Immunologia
0 visualizzazioni • 4:38 min • July 8th, 2025
Prelevare una colonna per cromatografia ad esclusione dimensionale impacchettata con una matrice inerte di particelle di resina polisaccaridica. Le particelle porose hanno una dimensione dei pori definita.
Lavare la colonna con un tampone di equilibratura per una purificazione ottimale.
Aggiungere un filtrato di coltura concentrato elaborato da una coltura di Mycobacterium tuberculosis , un batterio patogeno. Il filtrato contiene vescicole extracellulari, o EV, e altre proteine solubili secrete dai batteri.
Le vescicole extracellulari sono strutture sferiche di dimensioni eterogenee, piccole. Contengono macromolecole e fattori di virulenza racchiusi in un doppio strato lipidico.
Il campione entra nella matrice per gravità. Aggiungere il buffer per consentire lo spostamento del campione attraverso la colonna.
Le vescicole extracellulari non possono entrare nella resina a causa delle piccole dimensioni dei pori e si muovono invece attraverso lo spazio interparticellare, percorrendo un percorso più breve ed eluendo per prime.
Le proteine, avendo una dimensione più piccola, entrano nei pori, percorrono un percorso più lungo attraverso la resina ed eluiscono alla fine.
Raccogli le frazioni contenenti EV per l'analisi a valle.
Lasciare che la cromatografia ad esclusione dimensionale, o colonna SEC, si equilibri a temperatura ambiente. Accendere l'AFC utilizzando l'interruttore di alimentazione sul retro dell'unità a torre e, se necessario, premere SETUP sul touchscreen del menu principale per regolare le impostazioni della cella di carico. Dalla schermata SETUP, allineare il carosello selezionando CAROUSEL seguito da CALIBRATE. Inserire la giostra con i 13 piccoli fori rivolti verso l'alto nella torre AFC e regolare la giostra premendo i pulsanti meno o più in modo che l'ugello del fluido si trovi direttamente sopra la posizione di lavaggio.
Rimuovere i cappucci dalla colonna SEC bilanciata e far scorrere la colonna SEC nel supporto della colonna appropriato. Installarlo con cura sulla torre AFC. Assicurarsi che l'etichetta di identificazione a radiofrequenza sulla colonna sia rivolta verso l'AFC e verificare che il collegamento tra la colonna e la valvola sia sicuro. Posizionare il tubo di scarico in un contenitore di raccolta. Dalla schermata SETUP, selezionare Programma di raccolta e impostare il conteggio su 13 e la dimensione su 0.5 millilitri premendo i pulsanti meno o più.
Lasciare l'impostazione predefinita del volume del buffer di 2,7 millilitri, quindi chiudere la finestra Pianificazione raccolta. Seleziona Avvia raccolta dalla schermata principale e conferma i parametri di raccolta selezionando Sì. Caricare 13 provette per microcentrifuga da 1,7 millilitri etichettate con i coperchi aperti e rivolti verso il centro della giostra. Far avanzare l'AFC selezionando OK. Quindi, montare il serbatoio della colonna e avanzare nuovamente premendo OK.
Selezionare l'opzione per svuotare la colonna premendo Sì e aggiungere un volume di colonna di PBS filtrato a 0,2 micrometri per rimuovere qualsiasi buffer di archiviazione. Una volta completato il lavaggio, far avanzare l'AFC premendo OK. Posizionare il coperchio del carosello sull'AFC e premere OK. Utilizzare una pipetta per rimuovere il tampone in eccesso dalla colonna. Portare 3 milligrammi di campione 100R a 500 microlitri con 1x PBS e aggiungere il campione nella parte superiore della colonna.
Preparare un volume di colonna di PBS filtrato da 0,2 micrometri. Far avanzare l'AFC e lasciare che il campione penetri nella fritta. Una volta che il campione è entrato completamente nella colonna, aggiungere il PBS preparato in precedenza al serbatoio. Monitorare l'esecuzione dell'AFC mentre raccoglie prima il volume degli spazi vuoti e poi le frazioni specificate. Al termine della corsa e dopo che la giostra è tornata nella posizione di scarto, rimuovere il coperchio e i tubi di frazione dalla giostra.
In questo articolo viene descritto il processo di purificazione di vescicole extracellulari (EV) da Mycobacterium tuberculosis mediante cromatografia di esclusione molecolare (SEC). La metodologia evidenzia la separazione delle vescicole extracellulari dalle proteine solubili in base alla dimensione, facilitando le analisi successive.
La purificazione delle vescicole extracellulari (EV) di Mycobacterium tuberculosis mediante cromatografia di esclusione molecolare (SEC) risponde a un'esigenza fondamentale di preparazioni vescicolari ad alta purezza nella ricerca preclinica sulle malattie infettive. Questa tecnica consente un'isolazione affidabile delle EV per la caratterizzazione molecolare successiva, sostenendo studi meccanicistici e la validazione di bersagli nelle linee di ricerca sulle interazioni patogeno-ospite. La purificazione delle EV basata sulla SEC aumenta l'affidabilità predittiva nella ricerca traslazionale fornendo input standardizzati e riproducibili per saggi funzionali.
La purificazione degli EV basata sulla SEC si colloca all'interfaccia tra la fase iniziale della scoperta e la ricerca preclinica, fornendo input fondamentali per la validazione degli obiettivi, gli studi meccanicistici e lo sviluppo di saggi.
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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026