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Immunologia
0 visualizzazioni • 3:03 min • July 8th, 2025
Iniziare con una piastra a più pozzetti contenente liquido di lavaggio broncoalveolare di topo comprendente una popolazione di cellule immunitarie colorata con un colorante vitale fluorescente verde.
Introdurre anticorpi Fc per bloccare i recettori Fc delle cellule immunitarie.
Aggiungi un cocktail di anticorpi distinti marcati con fluorofori mirati a specifici marcatori cellulari. Rimuovere gli anticorpi non legati e risospendere le cellule in un tampone.
Utilizzando la citometria a flusso, identificare i singoletti di fluorescenza deboli, indicando le cellule vive.
Illuminare le cellule a 488 nanometri, facendo sì che le cellule emettano fluorescenza rossa correlata alle cellule che esprimono CD11c.
All'interno della popolazione ad alto contenuto di CD11c, con opportuni filtri di lunghezza d'onda, identificare le proteine marcatrici cellulari MHC-II sulle cellule dendritiche e SiglecF sui macrofagi.
Nella popolazione CD11c bassa, l'espressione di CD3 sulle cellule T e CD19 sulle cellule B ne consente l'identificazione.
Illuminare le cellule a 405 nanometri, emettendo fluorescenza blu, che indica i neutrofili che esprimono CD11b.
L'illuminazione delle cellule a 633 nanometri eccita i fluorofori rosso lontano sugli eosinofili che esprimono Ly-6G.
Utilizzando i dati della citometria a flusso, enumerare l'abbondanza di ciascun tipo di cellula immunitaria nel liquido di lavaggio broncoalveolare.
Dopo la terza raccolta di lavaggio broncoalveolare, centrifugare l'aspirato in pool e conservare il surnatante a una temperatura negativa di 80 gradi Celsius. Risospendere il pellet in 200 microlitri di tampone di lisi ACK. Dopo non più di due minuti a temperatura ambiente, diluire il tampone di lisi con un millilitro di PBS freddo e raccogliere le cellule per centrifugazione.
Risospendere il pellet nel volume appropriato di PBS per il numero di campioni da analizzare e aliquotare le cellule nel numero appropriato di pozzetti di una piastra da 96 pozzetti per l'analisi. Raccogliere le cellule mediante un'altra centrifugazione e risospendere i pellet in 50 microlitri di blocco FC in PBS.
Dopo 10 minuti a temperatura ambiente, aggiungere 50 microlitri del cocktail di anticorpi appropriato di interesse a ciascun pozzetto e incubare le cellule per 30 minuti a quattro gradi Celsius al riparo dalla luce. Al termine dell'incubazione, centrifugare la piastra e scartare il surnatante, risospendendo i pellet fino a un volume finale di 200 microlitri di tampone FACS per pozzetto per l'analisi citofluorimetrica.
In questo articolo viene descritto un metodo per l'analisi delle popolazioni di cellule immunitarie nel liquido di lavaggio broncoalveolare di topo mediante citometria a flusso. Il protocollo prevede la colorazione delle cellule con anticorpi fluorescenti per identificare marcatori specifici delle cellule immunitarie.
Il profilo delle cellule immunitarie basato sulla citometria a flusso nel liquido di lavaggio broncoalveolare consente una quantificazione precisa degli infiltrati infiammatori, supportando la validazione degli obiettivi nei modelli di malattie respiratorie. Questo approccio fornisce dati quantitativi e specifici per marcatore che migliorano la riduzione del rischio meccanicistica collegando i fenotipi immunitari ai processi fisiopatologici. Il metodo supporta le decisioni nelle fasi iniziali della scoperta fornendo dati riproducibili di profilazione immunitaria ad alto contenuto informativo, fondamentali per la selezione del portafoglio nella ricerca in immunologia e infiammazione.
Il metodo si inserisce nel percorso dalla scoperta alla fase preclinica, supportando il profilo immunitario dal test delle ipotesi fino all'ottimizzazione del composto promettente e alla validazione preclinica in modelli di infiammazione respiratoria.
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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026