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Iniziare con un chip sensore in vetro con array nanostrutturati in oro funzionalizzati con un monostrato autoassemblato contenente gruppi carbossilici.
Fissare il chip all'interno di un gruppo microfluidico e introdurre un linker per attivare i gruppi carbossilici.
Aggiungere ligandi peptidici, coniugandoli con i gruppi carbossilici attivati tramite linker.
Trattare con un tampone contenente un composto disattivatore, disattivando i siti di legame non specifici, e lavare con un tampone.
Focalizza una luce polarizzata sul chip. Utilizzando un sistema di risonanza plasmonica di superficie localizzata, è possibile ottenere un'immagine degli array, che appaiono come quadrati luminosi su uno sfondo scuro.
All'angolo di risonanza, gli elettroni d'oro assorbono la luce. Misurare l'intensità della luce riflessa all'angolo corrispondente per generare la risposta del sensore.
Introdurre cellule di ibridoma secernenti proteine, che si legano al chip e lavano.
Le cellule attaccate secernono proteine che interagiscono con i ligandi sull'array vicino.
Queste interazioni alterano l'angolo e l'intensità della luce riflessa, con conseguente cambiamento nella risposta del sensore, confermando l'attività secretoria delle cellule.
Per la pulizia e la rigenerazione della risonanza plasmonica di superficie localizzata, o chip LSPR, cenere di plasma a una potenza di 40 watt in una miscela da 300 millilitri di idrogeno al 5% e argon al 95% per 45 secondi. Funzionalizzare la superficie dell'oro e le nanostrutture subito dopo l'incenerimento al plasma immergendo il chip in una soluzione di tiolo etanolico bicomponente costituita da un rapporto 3 a 1 di SPO e SPC. Dopo aver lasciato il chip nella soluzione di tiolo per una notte per formare un monostrato autoassemblato, sciacquarlo con etanolo e asciugarlo con azoto gassoso.
Caricare il chip LSPR all'interno di un supporto microfluidico su misura posizionando il chip su un pezzo inferiore in alluminio. Quindi, inserire il chip tra questo pezzo inferiore e una guarnizione in silicone e un pezzo superiore in plastica trasparente utilizzando quattro viti per bloccare il gruppo.
Per una tipica applicazione di tioli a base di SPC, applicare 300 microlitri di una miscela 1 a 1 di EDC da 133 millimolari e NHS da 33 millimolari in acqua distillata deionizzata per attivare i gruppi carbossilici del componente tiolico SPC. Dopo aver atteso 10 minuti, risciacquare manualmente la superficie con PBS da 10 millimolari.
Successivamente, coniugare il gruppo carbossilico attivato con il ligando di interesse rivestendo 300 microlitri della soluzione di ligando. Dopo aver atteso 1 ora e risciacquato la superficie con 10 millimolari di PBS, applicare 300 microlitri di etanolammina molare 0,1 in PBS sul chip per ridurre al minimo il legame aspecifico. Dopo aver atteso 10 minuti, lavare l'etanolammina con PBS, contenente lo 0,005% di Tween 20 o PBS-T20.
Quindi, posiziona un pezzo di quarzo sopra il chip per ridurre le fluttuazioni nei dati relativi a un menisco variabile. Mantenere il chip bagnato con il tampone PBS-T20 durante il montaggio sul microscopio. Collegare il tubo microfluidico al gruppo e al tampone di flusso fino a raggiungere uno stato stazionario. Quindi, posizionare saldamente il gruppo della punta LSPR nel supporto del campione del tavolino riscaldato.
La configurazione ottica per questo metodo è mostrata qui. La luce della lampada alogena viene fatta passare attraverso un filtro passante lungo 593 nanometri per eliminare le lunghezze d'onda, che non contribuiscono alla risposta nanoplasmonica. La luce viene quindi polarizzata linearmente e il campione viene illuminato, tramite un obiettivo ad apertura numerica 40x 1,4 per l'eccitazione delle nanostrutture plasmoniche dell'oro. La luce diffusa viene raccolta dall'obiettivo e fatta passare attraverso un polarizzatore incrociato per ridurre il segnale di fondo dal substrato di vetro. Un divisore di fascio 50/50 viene inserito nel percorso della luce raccolta per l'analisi spettroscopica e delle immagini simultanee.
Dopo aver lasciato equilibrare l'assemblaggio e il microscopio per almeno due ore, allineare il chip utilizzando il joystick in modo che l'array centrale sia allineato con la fibra ottica per la spettroscopia. Dopo aver coltivato e pellettato le cellule di ibridoma mediante centrifugazione, raccoglierle. Quindi, verifica la fattibilità prima di introdurli nei chip LSPR. Successivamente, introdurre manualmente 50 microlitri della soluzione cellulare sui chip LSPR con una micropipetta. Infine, lavare via le cellule rimanenti in soluzione con terreni freschi privi di siero utilizzando un sistema di perfusione microfluidica per preparare i chip LSPR per l'imaging.