JoVE Encyclopedia of Experiments
Immunologia
0 visualizzazioni • 5:10 min • July 8th, 2025
Trattare sia la piomelanina che i ceppi batterici non produttori di piomelanina con un agente di prova.
La piomelanina, un pigmento extracellulare, fornisce protezione contro lo stress ossidativo.
L'agente in esame interrompe la biosintesi della piomelanina, riducendone la produzione.
Dopo l'incubazione, eseguire diluizioni batteriche seriali con un tampone contenente l'agente di prova o il solvente del veicolo.
Individuare le diluizioni batteriche su piastre di agar con concentrazioni variabili di perossido di idrogeno, un fattore di stress ossidativo.
Le piastre prive di perossido di idrogeno fungono da controlli.
incubare. Nelle piastre di controllo, i batteri formano colonie.
Nel ceppo produttore di piomelanina non trattato, la piomelanina protegge i batteri dal danno ossidativo indotto dal perossido di idrogeno, con conseguente formazione di colonie pigmentate.
Tuttavia, il ceppo produttore di piomelanina trattato con l'agente in esame, che presenta una riduzione della piomelanina, diventa sensibile allo stress ossidativo, con conseguente morte batterica.
Conta le colonie.
La riduzione del numero e delle dimensioni delle colonie con l'aumento delle concentrazioni di perossido di idrogeno nei ceppi produttori di piomelanina trattati e nei ceppi non produttori di piomelanina trattati e non trattati rispetto ai controlli indica un'aumentata sensibilità batterica allo stress ossidativo.
Per iniziare questa procedura, impostare colture notturne dei ceppi da testare in LB, con e senza NTBC. Il giorno seguente, preparare piastre di agar LB contenenti perossido di idrogeno come fattore di stress ossidativo. Innanzitutto, sciogliere i palloni di agar LB e raffreddare il terreno a circa 50 gradi Celsius a temperatura ambiente.
Quindi, aggiungere il perossido di idrogeno direttamente al mezzo raffreddato alle concentrazioni desiderate. Agitare il pallone per mescolare. Un intervallo di concentrazioni di perossido di idrogeno da 0 a 1 millimolare è un buon punto di partenza. Versate subito i piatti, e fiammate la superficie per eliminare le bolle. La resa è di quattro piastre per 100 millimetri di agar LB. Segnare le piastre con la concentrazione di perossido di idrogeno.
Posizionare le piastre scoperte in una cappa a flusso biologico, con una ventola in funzione per 30 minuti per rimuovere l'umidità in eccesso dalle piastre. I piatti devono essere utilizzati lo stesso giorno in cui vengono preparati. Mentre le piastre si asciugano, lavare e misurare l'OD600 delle colture notturne.
Normalizzare l'OD600 di tutte le colture notturne al valore più basso per l'insieme di ceppi da testare. A tale scopo, determinare il volume di coltura necessario per diluire la coltura al minimo OD600 in un volume totale di 1 millilitro.
Ad esempio, se una coltura ha un OD600 di 3 e l'OD600 più basso per l'insieme di ceppi è 2,5, eseguire il seguente calcolo, che risulterà in 0,833 millilitri come volume di coltura necessario. Mettere 0,833 millilitri di coltura in un tubo per microfuge. Successivamente, calcolare la quantità di LB più NTBC o LB più DMSO necessaria per portare il volume di coltura a 1 millilitro. In questo esempio, la quantità sarebbe di 0,167 millilitri. Mescolare a vortice.
Per mantenere le colture in una concentrazione costante di NTBC o DMSO, eseguire diluizioni seriali di 10 volte delle colture notturne normalizzate in PBS più NTBC o PBS più DMSO. Realizza soluzioni stock di PBS più NTBC e PBS più DMSO che aumentano o diminuiscono, a seconda del numero di ceppi testati.
Per una serie di diluizioni per un ceppo, mescolare 300 micromolari di NTBC o un volume equivalente di DMSO con PBS per ottenere un volume totale di 720 microlitri. Aggiungere 90 microlitri di PBS più NTBC o PBS più DMSO alle provette per microfugi appropriate etichettate per 10 a meno 1 fino a 10 fino a meno 7 diluizioni seriali. Aggiungere 10 microlitri di coltura al tubo di diluizione appropriato da 10 a meno 1.
Mescolare a vortice e trasferire 10 microlitri di 10 alla diluizione meno 1 alla provetta di diluizione 10 a meno 2. Sostituzione dei puntali delle pipette tra una diluizione e l'altra, ripetere l'operazione fino a quando non sono state eseguite tutte le diluizioni.
Individuare 5 microlitri delle diluizioni da 10 a meno 3 attraverso 10 a meno 7 su piastre di perossido di idrogeno LB più in duplicato per ogni ceppo. Utilizzare un puntale per pipetta se sono piastrate delle macchie da diluire più a meno. Non inclinare o inclinare la piastra, fino a quando il liquido non si è asciugato nella piastra. Incubare le piastre a 37 gradi Celsius. Da 24 a 48 ore, a seconda della varietà. Una volta che sono apparse colonie di buone dimensioni, fotografa le lastre utilizzando una fotocamera CCD sopra un transilluminatore.
Questo studio analizza il ruolo della piomelanina nella protezione dei ceppi batterici dallo stress ossidativo. Trattando sia ceppi produttori che non produttori di piomelanina con un agente di prova, sono stati valutati gli effetti sulla sopravvivenza batterica in condizioni ossidative.
Questo saggio con piastra a pozzetti consente una rapida valutazione delle risposte allo stress ossidativo batterico, supportando la validazione degli bersagli nella scoperta di agenti antimicrobici mediante l'associazione tra inibizione della biosintesi della piomelanina e aumento della suscettibilità ai danni ossidativi. Il metodo fornisce letture quantitative della vitalità delle colonie in condizioni controllate di stress ossidativo, facilitando l'identificazione meccanicistica di composti che alterano vie batteriche protettive. Offre una piattaforma scalabile e riproducibile per lo screening iniziale di agenti che rendono i patogeni più sensibili agli scatti ossidativi derivati dall'ospite.
Il saggio si inserisce nel percorso di scoperta che va dalla validazione del target hit all'ottimizzazione del composto leader, in cui la sensibilità allo stress ossidativo funge da biomarcatore funzionale dell'inibizione della via.
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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026